book-Quy-trinh-PRP-va-tiem-cay-mo-nang-cao-chuan_compressed

Chương 4
Xử lý mỡ được thu hoạch
44
đã qua xử lý (Hình 4.10, 4.11, 4.12, 4.13, 4.14,
4.15, 4.16, 4.17, 4.18, và 4,19).
Bảng 4.1 Dữ liệu thử nghiệm chứng minh khả năng bảo quản tế bào gốc mỡ (ASCs) cao hơn
sau khi xử lý bằng hệ thống Microfat Goisis so với ly tâm Coleman
Coleman
Goisis
14 NGÀY SAU KHI NHUỘM
72H SAU KHI NHUỘM
7 NGÀY SAU KHI NHUỘM
Hình. 4.10 Bước 1: Chuẩn bị. Sắp xếp thành phần:
Mở và đặt thành phần của bộ dụng cụ lên khu
vực vô trùng: bộ dụng cụ được cấu tạo bởi: 1: bộ
lọc đầu tiên để lọc chất lỏng và tế bào gốc, được
nối với một ống. Ống dài một mét. 2: bộ lọc thứ
hai để lọc chất lỏng. 3: thiết bị lọc tự động với van
đầu vào và đầu ra. (Được xuất bản dưới sự cho
phép của © Mario Goisis 2018. Mọi quyền được
bảo lưu)
Hình. 4.11 Ba ống tiêm 60 cc, ba ống tiêm 10 cc,
cannula sử dụng một lần có đường kính 2 mm
để lấy mỡ qua da, kim 30G, kim 16G, canula 22G
để tiêm tê, kim 21G. (Được xuất bản dưới sự cho
phép của © Mario Goisis 2018. Mọi quyền được
bảo lưu)
Hình. 4.12 Ba ống tiêm 60 cc được kết nối với
hệ thống. Một cái rỗng, hai cái còn lại được làm
đầy bởi dung dịch Klein. (Được xuất bản bởi kind
permis- sion của © Mario Goisis 2018. Mọi quyền
được bảo lưu)

Quy trình PRP và tiêm cấy mỡ Nâng Cao
e-bacsy.com
45
Hình. 4.13 Gây tê.
Thuốc gây tê cục bộ
được truyền trực tiếp từ
hệ thống vào ống tiêm.
Bằng cách này, việc
thẩm thấu 120 cc gây tê
mất 5 phút. (Được xuất
bản dưới sự cho phép
của © Mario Goisis
2018. Mọi quyền được
bảo lưu)
Hình. 4.14 Thu hoạch chất béo trong da. Để thu
hoạch chất béo, ống tiêm VacLok © được chuyển
từ cách sử dụng “trượt bình thường” sang cách
sử dụng “khóa để giữ chân không”. Đặc biệt, để
thiết lập ống tiêm sang khóa, hãy di chuyển pít-
tông hoàn toàn về phía trước hoặc hoàn toàn về
phía sau và xoay pít-tông để các vây khóa có thể
gắn chốt chặn. Bằng cách này, ống tiêm VacLok
cho phép bạn khóa pít tông ở nhiều vị trí để tạo
chân không áp suất âm. Áp suất âm được duy trì
và ống tiêm dần dần được lấp đầy bởi chất béo.
Khóa chốt ở vị trí “b”. (Được xuất bản dưới sự cho
phép của © Mario Goisis 2018. Mọi quyền được
bảo lưu)

Chương 4
Xử lý mỡ được thu hoạch
46
Hình. 4.15 Chuyển chất béo vào hệ thống và lọc.
Khi ống tiêm được làm đầy hoàn toàn bởi chất béo
trộn với máu và thuốc tê, nó sẽ được kết nối trực
tiếp với hệ thống. Hàm lượng thấp hơn của ống
Hình. 4.16 Rửa. Kéo pít-tông của ống tiêm VacLok.
Thao tác này sẽ tự động rút dung dịch muối. Chờ
60 giây, sau đó ấn pít-tông xuống để di chuyển
thành phần ở phần dưới của VacLok ra ngoài. Trên
thực tế, do bị phân tách bởi trọng lực nên ở phần
dưới của ống tiêm là máu cô đặc, nước và thuốc
tê cục bộ. Van một chiều tự động hướng các phần
tử này đến ống tiêm chất thải. Chờ 60 s sự phân
tách giữa chất béo và nước, và lặp lại quy trình lần
thứ ba. Màu sắc của chất béo chuyển từ cam sang
vàng. (Được xuất bản dưới sự cho phép của ©
Mario Goisis 2018. Mọi quyền được bảo lưu)
tiêm (tế bào màu đỏ và dung dịch Klein, mũi tên
màu đỏ) được đẩy tự động theo một hướng. (Được
xuất bản dưới sự cho phép của © Mario Goisis
2018. Mọi quyền được bảo lưu)

Quy trình PRP và tiêm cấy mỡ Nâng Cao
e-bacsy.com
47
Hình. 4.17 Lần lọc cuối cùng. Đẩy pít-tông của ống
tiêm xuống lần cuối. Microfat (mũi tên màu vàng)
bị chặn bởi bộ lọc đầu tiên. Ngược lại, phần nước
còn lại với SVF và các tế bào màu đỏ được ép ra
ngoài bộ lọc đầu tiên. Phần mạch mô đệm (mũi
Hình. 4.18 Bộ sưu tập SVF. Một ống tiêm 10 cc được kết nối để thu thập SVF (phần mạch mô đệm). (Được
xuất bản dưới sự cho phép của © Mario Goisis 2018. Mọi quyền được bảo lưu)
tên đen) được ngăn lại bởi bộ lọc thứ hai. Các tế
bào và chất lỏng màu đỏ và trắng (mũi tên đỏ)
được đẩy tự động vào ống tiêm chất thải. Tất cả là
tự động và không cần phải di chuyển khóa hoặc
van.

Chương 4
Xử lý mỡ được thu hoạch
48
Hình. 4.19 Mũi tiêm. Microfat đã sẵn sàng để tiêm.
(Được xuất bản dưới sự cho phép của © Mario
Goisis 2018. Mọi quyền được bảo lưu)
Tham khảo thêm
1. Boschert MT, Beckert BW, Puckett CL,
Concannon MJ. Analysis of lipocyte viability af-
ter liposuction. Plast Reconstr Surg. 2002;109:
761–5.
2. Peer LA. Cell survival theory versus
replacement theory. Plast Reconstr Surg (1946).
1955;16:161–8.
3. Eto H, Kato H, Suga H, Aoi N, Doi K,
Kuno S, Yoshi- mura K. The fate of adipocytes
after nonvascularized fat grafting: evidence of e
arly death and replacement of adi- pocytes. Plast
Reconstr Surg. 2012;129:1081–92.

4. Zuk PA, Zhu M, Ashjian P, et al. Human
adipose tis- sue is a source of multipotent stem
cells. Mol Biol Cell. 2002;13:4279–95.
5. Kølle SF, Fischer-Nielsen A, Mathiasen
AB, et al. Enrichment of autologous fat grafts with
ex-vivo expanded adipose tissue- derived stem
cells for graft survival: a randomised placebo
controlled trial. Lancet. 2013;382:1113–20.
6. Zhu M, Cohen SR, Hicok KC, Shanahan
RK, Strem BM, Yu JC, Arm DM, Fraser JK.
Comparison
of
three
different
fat
graft
prepa- ration methods: gravity separation,
centrifugation, and simultane- ous washing with
filtration in a closed system. Plast Reconstr Surg.
2013;131(4):873–80.
7. Cleveland EC, Albano NJ, Hazen A. Roll,
spin, wash, or filter? Processing of lipoaspirate
for
autologous
fat
grafting:
an
updated,
evidence-based review of the literature. Plast
Reconstr Surg. 2015;136(4):706–13.
8. Botti G, Pascali M, Botti C, Bodog F,
Cervelli V. A clinical trial in facial fat grafting:
filtered and washed versus centrifuged fat. Plast
Reconstr Surg. 2011;127:2464–73.
9. Gir P, Brown SA, Oni G, Kashefi N, Mojallal A,
Rohrich RJ. Fat grafting: evidence-based review
on autologous fat harvest- ing, processing,
reinjection, and storage. Plast Reconstr Surg.
2012;130:249–58.
10. Hoareau L, Bencharif K, Girard AC, et
al. Effect of centrifugation and washing on
adipose graft viability: a new method to improve
graft efficiency. J Plast Reconstr Aesthet Surg.
2013;66:712–9.
11. Condé-Green A, Wu I, Graham I, et al.
Comparison of 3 techniques of fat grafting and
cell-supplemented lipotransfer in athymic rats: a
pilot study. Aesthet Surg J. 2013;33:713–21.
12. Pu LL, Coleman SR, Cui X, Ferguson RE
Jr, Vasconez HC. Autologous fat grafts harvested
and refined by the Coleman tech- nique: a
comparative
study.
Plast
Reconstr
Surg.
2008;122:932–7.
13. Conde-Green A, Gontijo de Amorim N,
Pitanguy I. Influence of decantation, washing and
centrifugation on adipocyte and mesen- chymal
stem cell content of aspirated adipose tissue:
a comparative study. J Plast Reconstr Aesthet
Surg. 2010;63:1375–81.
14. Pfaff M, Wu W, Zellner E, Steinbacher DM.
Processing tech- nique for lipofilling influences
adipose-derived stem cell con- centration and
cell viability in lipoaspirate. Aesthet Plast Surg.
2014;38:224–9.

49
e-bacsy.com
Chương
5
Xử lý Microfat theo
từng bước
Mario Goisis, Sara Izzo, Andrea
Sbarbati, Giamaica Conti
và
Giovanni Francesco Nicoletti

Chương 5
Xử lý Microfat theo từng bước
50
Phương pháp xử lý với rửa và lọc khép kín
với hệ thống Microfat được mô tả (Hình.5.1–
5.29).
5.1 Các vật liệu và phương pháp
Microfat có thể được xử lý trong nhà máy
y tế / phòng mổ nhỏ.
Một hộp microfat tiêu chuẩn được sử
dụng cho quy trình (Hình. 5.11).
Hộp microfat bao gồm một số yếu tố sử
dụng một lần: một hệ thống dốc nối với hệ
thống khép kín để rửa và lọc, bốn ống tiêm 60
cc, hai ống tiêm 10 cc và một ống tiêm 1 cc.
Hộp vi chất béo có thể được sử dụng
cùng với một số phần tử có thể hấp tiệt trùng:
đặc biệt là khay microfat (Hình 5.12). Khay
Goisis bao gồm một giá đỡ bằng nhựa cho
hệ thống dốc và hai khay cho dung dịch nước
muối và Klein.
Thuốc bao gồm:
•
100 cc dịch saline lạnh
•
Hỗ trợ: không cần trợ lý khi xử lý mỡ.
5.2 Quy trình theo từng bước
Sau đó ấn pít-tông xuống để di chuyển
thành phần ra khỏi phần dưới của ống tiêm C.
Do bị phân tách bởi trọng lực nên máu, nước
và thuốc tê tại chỗ sẽ tập trung ở phần dưới
của ống tiêm. Van một chiều tự động hướng
các phần tử này đến ống tiêm A và đến bộ
lọc (mũi tên màu cam). Chờ 60s để xảy ra
sự phân tách giữa chất béo và nước. Lặp
lại quy trình cho đến khi màu của chất béo
trong ống tiêm C chuyển từ màu cam sang
màu vàng (Hình. 5.13, 5.14, 5.15, 5.16, 5.17,
5.18, 5.19, 5.20, 5.21, và 5.22).
Hình. 5.1 Một hộp Microfat theo quy trình tiêu
chuẩn được sử dụng . Hộp Microfat được cấu tạo
bởi một số yếu tố sử dụng một lần: một hệ thống
dốc với hệ thống khép kín để rửa và lọc, bốn ống
tiêm 60 cc, hai ống tiêm 10 cc, một ống tiêm 1 cc.
(Được xuất bản dưới sự cho phép của © Mario
Goisis 2018. Mọi quyền được bảo lưu)
M. Goisis (*)
Phẫu thuật viên thẩm mỹ và hàm mặt, Bệnh viện Go Easy, Milan, Italy
S. Izzo · G. F. Nicoletti
Khoa Phẫu thuật thẩm mỹ, Đại học Campania “Luigi Vanvitelli”, Naples, Italy
A. Sbarbati · G. Conti
Khoa y học thần kinh, y sinh và vận động, Phân môn giải phẫu và mô học, Đại học Verona,
Verona, Italy

Quy trình PRP và tiêm cấy mỡ Nâng Cao
e-bacsy.com
51
Hình. 5.2 Hộp Microfat có thể được sử dụng cùng
với một số phần tử có thể hấp vô trùng: cụ thể là
khay Microfat (Hình 5.12). Khay Goisis được cấu
tạo bởi một giá đỡ bằng nhựa cho đường dốc và
hai khay cho dung dịch Klein và dung dịch muối.
Thuốc bao gồm: 100 cc dung dịch nước muối lạnh.
Trợ lý: không cần trợ lý để xử lý chất béo. Thủ tục
từng bước. (Được xuất bản dưới sự cho phép của
© Mario Goisis 2018. Mọi quyền được bảo lưu)
Hình. 5.4 Chất béo trộn với máu và thuốc tê được
đẩy và chuyển trực tiếp từ ống tiêm E sang ống
tiêm A. (Được xuất bản dưới sự cho phép của ©
Mario Goisis 2018. Mọi quyền được bảo lưu)
Hình. 5.3 Chất béo được thu hoạch bằng ống tiêm
E. Khi ống tiêm E được bơm đầy hoàn toàn, di
chuyển khóa vòi về vị trí “a”. (Được xuất bản dưới
sự cho phép của © Mario Goisis 2018. Mọi quyền
được bảo lưu)
Hình. 5.5 Lặp lại quy trình 4–6 lần để thu được
lượng chất béo vừa đủ. (Được xuất bản dưới sự
cho phép của © Mario Goisis 2018. Mọi quyền
được bảo lưu)

Chương 5
Xử lý Microfat theo từng bước
52
Hình. 5.6 Khi kết thúc quy trình thu hoạch, ống
tiêm E được đổ đầy dung dịch muối. (Được xuất
bản dưới sự cho phép của © Mario Goisis 2018.
Mọi quyền được bảo lưu)
Hình. 5.7 Bằng cách di chuyển khóa vòi ở vị trí “a”,
nước muối được truyền vào hệ thống. (Được xuất
bản dưới sự cho phép của © Mario Goisis 2018.
Mọi quyền được bảo lưu)
Hình. 5.8 Bằng cách này,
thành phần của ống nối
với ống tiêm E với hệ
thống được rửa sạch.
Bên phải: ống được làm
đầy bởi chất béo trộn với
máu. Bên trái: ống chứa
đầy nước muối. (Được
xuất bản dưới sự cho
phép của © Mario Goisis
2018. Mọi quyền được
bảo lưu)

Quy trình PRP và tiêm cấy mỡ Nâng Cao
e-bacsy.com
53
Hình. 5.9 Vòi được chuyển từ vị trí “a” sang vị trí
“b”. (Được xuất bản dưới sự cho phép của © Mario
Goisis 2018. Mọi quyền được bảo lưu)
Hình. 5.10 Sau đó, ấn xuống pít-tông của ống tiêm
A. Do bộ lọc, hầu hết các tế bào máu và thuốc tê
sẽ tự động được dẫn đến ống tiêm D (mũi tên màu
đỏ). Ngược lại, các tế bào mỡ được duy trì vào hệ
thống. Trên thực tế, tế bào gốc chất béo và nhiều
thành phần của SVF quá lớn để vượt qua bộ lọc
Hình. 5.11 Do chất béo và SVF không thể đi qua bộ
lọc, áp suất đưa vào hệ thống sẽ tự động mở ra.
Bằng cách này, không cần mở (mũi tên màu vàng)

Chương 5
Xử lý Microfat theo từng bước
54
Hình. 5.12 Để loại bỏ hoàn toàn dung dịch Klein
và các tế bào màu đỏ, chất béo phải được rửa
sạch. Hệ thống có các van một chiều đảm bảo rửa
chất béo rất đơn giản và nhanh chóng. (Được xuất
bản dưới sự cho phép của © Mario Goisis 2018.
Mọi quyền được bảo lưu)
Hình. 5.13 Bằng cách đẩy pít-tông của ống tiêm B,
hàm lượng nước muối trong ống tiêm sẽ được tự
động chuyển vào ống tiêm
Hình. 5.14 Chờ 60 giây, để chất béo di chuyển tự
nhiên ở phần trên của ống tiêm C. Sau đó ấn pít-
tông xuống để di chuyển chất béo ở phần dưới của
ống tiêm C. Trên thực tế, do sự tách biệt bằng trọng
lực, ở phần dưới của ống tiêm là máu cô đặc, nước
và thuốc tê tại chỗ. Van một chiều tự động hướng
các phần tử này đến ống tiêm A và đến bộ lọc (mũi
tên màu cam). Chờ 60 giây sự tách biệt giữa chất
béo và nước, và lặp lại quy trình. Màu của chất
béo trong ống tiêm C chuyển từ màu da cam sang
màu vàng
Hình. 5.15 Thay dung dịch nước muối trong ống
tiêm B. (Được xuất bản dưới sự cho phép của ©
Mario Goisis 2018. Mọi quyền được bảo lưu)

Quy trình PRP và tiêm cấy mỡ Nâng Cao
e-bacsy.com
55
Hình. 5.16 Loại bỏ dung dịch đã rửa bằng ống
tiêm A. (Được xuất bản dưới sự cho phép của ©
Mario Goisis 2018. Mọi quyền được bảo lưu)
Hình. 5.17 Lặp lại quy trình rửa một hoặc nhiều
lần để có được sự thay đổi màu sắc của thành
phần của ống tiêm C dạng cam sang màu vàng
(Được xuất bản dưới sự cho phép của © Mario
Goisis 2018. Mọi quyền được bảo lưu)
Hình. 5.18 Chuyển chất béo đã rửa sạch trong
ống tiêm C sang ống tiêm A. Sau đó đẩy dung dịch
nước muối vào ống. Bằng cách này, toàn bộ thành
phần chất béo được chuyển vào ống tiêm. (Được
xuất bản dưới sự cho phép của © Mario Goisis
2018. Mọi quyền được bảo lưu)
Hình. 5.19 Mở khóa vòi từ vị trí “b” sang vị trí “a”.
Bằng cách này, ống tiêm E được kết nối với ống và
hệ thống. Theo cách này, bằng cách đẩy pít-tông
của ống tiêm A, ống tiêm E được đổ đầy trực tiếp từ
hệ thống dốc. Và vì trước đó ống đã được lấp đầy
bởi dung dịch nước muối, nên ban đầu ống tiêm
E sẽ được lấp đầy bởi nước muối. (Được xuất bản
dưới sự cho phép của © Mario Goisis 2018. Mọi
quyền được bảo lưu)

Chương 5
Xử lý Microfat theo từng bước
56
Hình. 5.20 Dung dịch nước muối được đẩy từ ống
tiêm E. Nút chặn ở vị trí “b”. (Được xuất bản dưới
sự cho phép của © Mario Goisis 2018. Mọi quyền
được bảo lưu)
Hình. 5.21 Ống tiêm E được làm đầy bởi Microfat.
(Được xuất bản theo sứ mệnh của © Mario Goisis
2018. Mọi quyền được bảo lưu)
Hình. 5.22 Để tăng hiệu quả của liệu trình, điều
quan trọng là phải sử dụng mỡ chứa vào ống:
thực tế là khoảng 6-8cc. (Được xuất bản dưới sự
cho phép của © Mario Goisis 2018. Mọi quyền
được bảo lưu)
Hình. 5.23 Để làm được điều đó, người ta di
chuyển hàm lượng dung dịch nước muối của ống
tiêm B vào trong ống tiêm C
Hình. 5.24 Sau đó nước muối được đẩy vào ống
Hình. 5.25 Theo cách này, toàn bộ thành phần
bên phải: ống chứa đầy chất béo. Ở bên trái: ống
được rửa bằng nước muối.

Quy trình PRP và tiêm cấy mỡ Nâng Cao
e-bacsy.com
57
Hình. 5.26 Điều quan trọng là phải chú ý đến mức
nước muối: khi nước muối gần đến ống tiêm E,
khóa vòi được thay đổi từ vị trí “a” sang vị trí “b”
Hình. 5.28 Để tiêm chất béo dễ dàng hơn, một ống
tiêm 1 cc có thể được kết nối với hệ thống
Hình. 5.27 Ống tiêm E đã sẵn sàng để tiêm
Hình. 5.29 Bằng cách di chuyển khóa vòi thay thế
từ vị trí “a” sang vị trí “b”, bạn có thể làm đầy ống
tiêm nhỏ này nhiều lần

Chương 5
Xử lý Microfat theo từng bước
58

59
Chương
6
e-bacsy.com
Các kỹ thuật tiêm
Mario Goisis, Giuseppe A. Ferraro
và
Sara Izzo

Chương 6
Các kỹ thuật tiêm
60
Nhiều bài báo khoa học đã được xuất bản
liên quan đến việc thu hoạch và xử lý chất
béo; ngược lại, có rất ít bài báo về EBM liên
quan đến việc tiêm lặp lại chất béo có sẵn
trong tài liệu.
Bằng cách kiểm tra các tính chất cơ học
của chất béo, các phương án có thể được
đưa ra để bảo quản chất béo trong quá trình
tiêm. Với nguyên tắc này, thật thuận tiện để
đánh giá từng yếu tố của kỹ thuật tiêm một
cách cẩn thận và hiểu được các cơ chế sinh
học - vật lý và động học liên quan.
Một trong những phép đo vật lý quan
trọng nhất của chất béo là độ nhớt của nó.
Độ nhớt là thước đo khả năng chống lại
dòng chảy của chất lỏng. Nó xác định ma sát
bên trong của chất lỏng chuyển động.
Ví dụ, nếu chúng ta cho mật ong vào
một cái phễu, chúng ta sẽ thấy rằng cái phễu
thoát nước rất chậm (Hình. 6.1).
Điều này là do độ nhớt của mật ong cao
so với các chất lỏng khác. Trên thực tế, nếu
chúng ta đổ đầy nước vào cùng một cái phễu,
thì cái phễu thoát nước nhanh hơn nhiều.
Chất lỏng có độ nhớt cao đẩy lùi chuyển
động vì cấu trúc phân tử của nó tạo cho nó
nhiều ma sát bên trong. Một chất lỏng có
độ nhớt thấp, chảy dễ dàng vì cấu trúc phân
tử của nó gây ra rất ít ma sát khi nó chuyển
động.
Khi chất lỏng bị ép qua một ống hoặc
qua một cannula, các hạt tạo thành chất
lỏng thường di chuyển nhanh hơn ở trung
tâm của cannula và chậm hơn gần thành
của nó: do đó, một số lực stress (chẳng hạn
như sự chênh lệch giữa áp suất ở hai đầu của
cannula) là cần thiết để giảm ma sát tồn tại
giữa các lớp hạt và giữ cho chất lỏng chuyển
động. Lực stress cần thiết tỷ lệ với độ nhớt
của chất lỏng, đối với cùng một dạng vận
tốc. Khi vận tốc tăng, thì lực stress cũng tăng
(Hình 6.2).
Chất lỏng không chống lại lực stress xé
được gọi là chất lỏng lý tưởng hoặc không
thấm nước. Độ nhớt bằng không chỉ được tìm
thấy trong chất siêu lỏng ở nhiệt độ rất thấp.
Vì vậy, tất cả các chất lỏng đều có một số độ
nhớt. Nói chung, chất lỏng được giả định là
không thấm nếu độ nhớt của nó lớn hơn độ
nhớt của nước; nó được xem là di động nếu
độ nhớt của nó nhỏ hơn độ nhớt của nước.
Động học là nghiên cứu về dòng chảy của
vật liệu. Nó đặc biệt có lợi khi phân tích vật
liệu đàn hồi, hiển thị các đặc tính ở đâu đó
giữa đàn hồi chất rắn và chất lỏng nhớt. Chất
M. Goisis (*)
Phẫu thuật viên thẩm mỹ và hàm mặt, Bệnh viện Go Easy, Milan, Italy
G. A. Ferraro · S. Izzo
Doctor’s Equipe, Milan, Italy
Hình. 6.1 Mật ong có tỷ lệ nhớt cao. (Được xuất
bản dưới sự cho phép của © Mario Goisis 2018.
Mọi quyền được bảo lưu)

Quy trình PRP và tiêm cấy mỡ Nâng Cao
e-bacsy.com
61
Hình. 6.2 Khi chất lỏng bị ép qua một ống hoặc
qua một cannula, lực đứt gãy tỷ lệ với gradient của
vận tốc. (Được xuất bản dưới sự cho phép của ©
Mario Goisis 2018. Mọi quyền được bảo lưu)
rắn đàn hồi được gọi là bởi sự biến dạng tức
thời của chúng khi phản ứng với một lực tác
dụng, sau đó là sự trở lại ngay lập tức hình
dạng ban đầu của chúng khi lực đó bị loại
bỏ. Ngược lại, chất lỏng nhớt bị biến dạng
phụ thuộc vào thời gian (vĩnh viễn). Vật liệu
đàn hồi hiển thị cả biến dạng tức thời và biến
dạng phụ thuộc vào thời gian liên quan đến
lực tác dụng. Chất béo là một mô nhớt sinh
học, cũng như dây chằng, gân và sụn [3, 4].
Tính động học của chất béo có liên quan
đến lực đứt gãy. Lực đứt gãy xuất hiện khi
một lực tác dụng song song với một bề mặt,
bất chấp lực này vuông góc với bề mặt đó. Ví
dụ: cọ xát hai bàn tay của một người với nhau
gây ra lực đứt gãy, trong khi áp hai lòng bàn
tay vào nhau thì không.
Đối với quá trình làm đầy mỡ, lực đứt gãy
được áp dụng trên chất béo khi nó được đẩy
qua một ống, chẳng hạn như ống cannula. Ở
cùng một tốc độ vận tốc, lực đứt gãy tỷ lệ với
độ nhớt của chất béo. Khi độ nhớt cao, mức
độ lực đứt gãy cao sẽ được tạo ra.
Đồng thời, vì chất béo là vật liệu đàn hồi
nên nó phải chịu quá trình cắt mỏng. Điều
này đơn giản có nghĩa là khi lực đứt gãy tăng
lên, độ nhớt của vật liệu giảm.
Một số vật liệu cắt mỏng có thể “tự phục
hồi”, nghĩa là chúng có thể phục hồi hoàn
toàn độ nhớt ban đầu sau khi tiếp xúc với lực
đứt gãy cao.
Mỡ không phải vật liệu “tự lành”. Nó được
mô tả bởicác bài kiểm tra động học cho thấy
chất béo tiếp xúc với tốc độ lực cắt cao sẽ dẫn
đến thiệt hại không thể phục hồi, và tính toàn
vẹn cơ học của chất béo không thể [lấy] phục
hồi hoàn toàn sau thiệt hại này.
6.1 Tốc độ dòng và khả năng tồn
tại của mỡ
Atashroo và cộng sự. sử dụng các phép
thử động học đã chứng minh rằng sự tiếp
xúc của chất béo với lực đứt gãy cao dẫn đến
thiệt hại không thể phục hồi [1]. Đặc biệt, họ
thu hoạch và xử lý chất béo áp dụng kỹ thuật
Coleman, và tiêm vào nó bằng một ống can-
nula Coleman có đường kính 2 mm. Trong lần
thử nghiệm đầu tiên, chất béo được tiêm qua
một thiết bị tự động; ở lần thứ hai, nó được
tiêm bằng ống tiêm theo kỹ thuật Coleman
tiêu chuẩn. Điều thú vị là độ nhớt của chất
béo được tiêm bằng thiết bị tự động tương
tự như độ nhớt của chất béo trước khi tiêm,
trong khi nó lớn hơn đáng kể so với độ nhớt
của chất béo được tiêm bằng ống tiêm Cole-
man 1 cc cổ điển.
Điều này liên quan đến tốc độ dòng chảy
thấp hơn được thiết bị tự động đảm bảo.
Trên thực tế, tốc độ dòng chảy cao đã
được chứng minh là làm tổn thương chất
béo liên quan đến nhiều lực đứt gãy hơn. Ví
dụ, tốc độ dòng chảy theo thứ tự 0,5–1 cc /
s đã được khuyến nghị bởi Lee và cộng sự
để tối ưu hóa khả năng tồn tại của chất béo
[5]. Trong cùng một bài báo, các tác giả, xác
nhận công trình của Shiffman và Mirrafati, đã
sử dụng mô học để chứng minh rằng tốc độ
dòng chảy cao làm hỏng chất béo đáng kể
[6].
Goisis và cộng sự. tại hội nghị Face đã
trình bày một nghiên cứu về lực đứt gãy xảy
Độ dốc,
Lực đứt gãy,
Tốc độ, u

Chương 6
Các kỹ thuật tiêm
62
ra trong quá trình rửa, lọc và tiêm chất béo
so sánh hệ thống Goisis với các kỹ thuật
Coleman và Lipogems.
Việc giảm độ nhớt của chất béo khi sử
dụng hệ thống Goisis (tiêm với cannula 22G)
thấp hơn đáng kể so với mức giảm thu được
với hệ thống Lipogems (tiêm bằng cannula
25G) hoặc hệ thống Coleman (tiêm với một
cannula 22G [7] (Hình 6.3 và 6.4). Trong một
nghiên cứu khác được trình bày bởi Goisis và
cộng sự. Imcas 2018 (Goisis và cộng sự, so
sánh các giao thức, IMCAS 2018) tầm quan
trọng của lực đứt gãy trong việc bảo quản tế
bào gốc đã được thảo luận. Số lượng tế bào
gốc của 6 mẫu khác nhau được đo tại 72 giờ,
7 ngày và 14 ngày sau khi thu hoạch. Ba mẫu
liên quan đến kỹ thuật Goisis, với giá trị cao
của tế bào gốc ngay sau khi thu hoạch - với
Goisis Cannula (6443, 7596, 8950), sau khi xử
lý bằng Hệ thống Goisis (5601, 6300, 6500)
và sau đó đi qua cannula 22G (3976, 5950,
6460). 3 mẫu cuối cùng có liên quan đến kỹ
thuật Coleman với một sửa đổi rất đáng kể:
chất béo Coleman là được đưa qua một ống
cannula 22G. Giá trị của các tế bào gốc sau
khi thu hoạch bằng ống cannula Coleman là
5180, 5930 và 7410. Giá trị sau quá trình xử
lý Coleman (ly tâm) là 4940, 4210 và 5140.
Nhưng sau khi đi qua cannula 22G, các tế
bào gốc đã bị phá hủy bởi mức độ lực đứt
gãy cao, không có sự sống sót của các tế
bào gốc.
Điểm quan trọng
•
Tốc độ dòng chảy cao làm hỏng chất
béo, vì chúng tạo ra lực đứt gãy lớn hơn.
•
Tiêm chậm!
Hình. 6.3 Bóc tách giải phẫu thể hiện quá trình
tiêm chất béo sâu, tiêm bắp. Chất béo có màu xanh
lá cây trước khi tiêm (do Doctor’s Equipe cung cấp).
(Được xuất bản dưới sự cho phép của © Mario
Goisis 2018. Mọi quyền được bảo lưu)
Hình. 6.4 (a–c) máy đo độ nhớt
và thử nghiệm trượt thủy tinh: so
sánh giữa độ nhớt của chất béo
thu hoạch và chất béo đã qua
xử lý khi đi qua một ống tiêm
cannula.
(nhã
nhặn
Istituto
Ganassini, Milano). (Được xuất
bản dưới sự cho phép của ©
Mario Goisis 2018. Mọi quyền
được bảo lưu)

Quy trình PRP và tiêm cấy mỡ Nâng Cao
e-bacsy.com
63
6.2 Độ nhớt
Kích thước của các cổng cannula ảnh
hưởng trực tiếp đến độ nhớt của tế bào mỡ
mảnh ghép. Đặc biệt, việc sử dụng kích thước
cổng lớn hơn làm tăng độ nhớt của mảnh
ghép [8–10].
Trong trường hợp có độ nhớt cao, chất
béo được đẩy qua một cannula sẽ tạo ra lực
đứt gãy cao. Lực này sẽ dẫn đến hư hỏng
không thể phục hồi và tính toàn vẹn cơ học
của chất béo không thể phục hồi hoàn toàn
từ hư hỏng này.
Điểm quan trọng
•
Việc sử dụng kích thước cổng lớn hơn
trong quá trình thu hoạch chất béo làm
tăng nguy cơ tổn thương mảnh ghép
trong quá trình tiêm.
•
Sử dụng các cannula thu hoạch với kích
thước cổng nhỏ hơn
Hình. 6.4 (tiếp theo)
6.3 Tiêm bằng Cannula hoặc kim tiêm
Một nghiên cứu của Smith và cộng sự chỉ
ra rằng việc sử dụng kim để tiêm có thể phá
hủy chất béo nhiều hơn so với việc sử dụng
cannula vì khả năng gây ra lực đứt gãy lớn
hơn [11].
Điểm quan trọng
•
Việc sử dụng kim làm tăng tổn thương
cho chất béo.
•
Không dùng kim tiêm để tiêm mỡ.
6.4 Tiêm ở đâu
Amar và cộng sự. đã mô tả kỹ thuật FAMI,
một kỹ thuật để trẻ hóa khuôn mặt bằng cách
sử dụng ghép mỡ nhằm vào các cấu trúc giải
phẫu cụ thể và các mô đệm [12].

Chương 6
Các kỹ thuật tiêm
64
Họ gọi nó là FAMI, một từ viết tắt có
nghĩa là “tiêm vào cơ bắp bằng mô tự thân
trên khuôn mặt”. Theo ý kiến của họ, có thể
tăng tỷ lệ sống sót của tế bào mỡ bằng cách
tiêm chất béo gần hoặc thậm chí trong các
cơ biểu hiện trên khuôn mặt. Chất béo được
chuyển vào một hoặc nhiều ống tiêm 1 cc và
được gắn vào một hoặc nhiều trong số chín
cannula khác nhau. Các công thức này được
tạo hình để phù hợp với hình dạng cơ xương.
Nhóm cơ được tiêm, kiểu ngược dòng, với
1-3 cc chất béo, từ nơi đưa đến nguồn hoặc
ngược lại, trong một đến ba lần tiêm. Ngoại
lệ duy nhất là vùng dưới ổ mắt, nơi không thể
ghép quá 0,5 cc vì các nguy cơ được báo cáo
về các nốt sần và u nang. Cơ sở lý luận của
kỹ thuật FAMI là chất béo sẽ sống tối ưu khi
được ghép vào một đám rối mạch máu cơ
phong phú [13–15].
Các đề xuất sau phẫu thuật của FAMI
dựa trên quan điểm rằng “Càng ít cử động,
thì việc ghép cuối cùng sẽ càng thành công.”
Vì lý do này, bệnh nhân nên tránh không chỉ
cười hoặc chuyển động đột ngột trên khuôn
mặt cũng như nói chuyện. Họ cũng nên tránh
những dịp công khai đòi hỏi tương tác bằng
giọng nói, cũng như nói chuyện điện thoại.
Việc tránh căng thẳng cho cơ mặt này
cũng áp dụng cho chế độ ăn kiêng của bệnh
nhân, không chứa thức ăn cứng như táo hoặc
bánh mì dai. Thay vào đó, bệnh nhân nên ăn
thức ăn mềm hơn, chẳng hạn như chuối,
giảm đau để tránh bất kỳ thức ăn nào gây
căng thẳng quá mức cho hàm (
drrogeramar.com/ fami_step_step.php).
Goisis và cộng sự. đã mô tả việc tiêm chất
béo vào mặt phẳng tiêm bắp sâu bằng cách
sử dụng một cannula 22-gauge. Đặc biệt,
bằng cách sử dụng một ống tiêm đàn hồi và
một điểm tiêm, có thể tiêm chất béo vào mặt
phẳng sâu này của phần giữa và phần dưới
của khuôn mặt. Kỹ thuật tiêm được tạo ra
bằng cách bóc tách cấu trúc giải phẫu [16]
(Hình 6.3).
Điểm quan trọng
•
Việc tiêm chất béo vào các đám rối
mạch máu giàu cơ làm tăng sự sống sót
của các tế bào.
•
Tiêm chất béo vào mặt phẳng sâu, gần
hoặc vào mặt phẳng cơ.
6.4.1 Đường kính Cannula dùng
để tiêm
Trong kỹ thuật Coleman cổ điển, tiêm
chất béo được hình thành bằng cách sử dụng
các cannula Coleman (đường kính 1–2 mm)
mà các giọt nhỏ được tiêm vào không gian
ba chiều. Từ 10 đến 25 cc chất béo được tiêm
vào các lớp nông và sâu hơn ở mỗi bên của
khuôn mặt. Thông thường, tiêm nông được
thực hiện ở vùng thái dương (phía trên cân
cơ thái dương nông vì lý do mạch máu), vùng
vết chân chim và phần trước của má (để cho
phép hỗ trợ trực tiếp da ở vùng phía sau hai
khu vực này). Tiêm vào các mặt phẳng sâu
hơn được thực hiện ở vùng gờ xương gò má,
mỡ dưới da (SOOF), rãnh lệ, phần trung tâm
của mặt giữa, nếp gấp mũi – môi và nếp gấp
miệng.
Đường kính lớn của các cannula, kết hợp
với kỹ thuật đa tầng, thường liên quan đến
phù nề và u máu. Willemsen và cộng sự. báo
cáo rằng những bệnh nhân trải qua phương
pháp bơm mỡ bằng kỹ thuật Coleman đã 18,9
ngày để tiếp tục các hoạt động xã hội của họ,
khoảng thời gian giảm xuống còn 13,2 ngày
khi chất béo được kết hợp với PRP [17].
Mặc dù vậy, không gian chết được tăng
lên khi sử dụng các cannula lớn hơn. Khoảng
trống này sẽ được lấp đầy bởi huyết thanh
trên mô sẹo, và làm giảm sự tích hợp tế bào.
Goisis và cộng sự. [16] đề xuất tiêm lớp
sâu mỏng bằng cách sử dụng một cannula
22G.
Đặc biệt, chất béo được thu hoạch bằng
cách sử dụng các cannula nhỏ của Goisis có
tỷ lệ độ nhớt thấp. Do đó, có thể tiêm nó bằng
cách sử dụng một cannula nhỏ, do đó tạo ra
một tỷ lệ lực đứt gãy thấp. Goisis và cộng sự.
so sánh độ nhớt trước và sau khi tiêm, chứng
tỏ rằng sự thay đổi là nhỏ. Việc duy trì độ nhớt
là một minh chứng về sự bảo toàn tính toàn
vẹn của chất béo.
Việc sử dụng các ống cannula nhỏ tạo ra
một không gian chết nhỏ, làm giảm các mô

Quy trình PRP và tiêm cấy mỡ Nâng Cao
e-bacsy.com
65
sẹo cản trở quá trình tích hợp tế bào. Tiêm
vào mặt phẳng sâu diễn ra gần với đám rối
mạch máu cơ phong phú. Kỹ thuật này đơn
giản và dựa trên bốn điểm vào chính. Qua
những điểm này có thể tiêm vào vùng gò má,
má, nếp gấp rãnh mũi má, môi, cằm và tuyến
lệ.
Điểm quan trọng
•
Việc sử dụng các ống cannula có G lớn
hơn làm tăng không gian chết và làm
giảm sự tồn tại của các tế bào.
•
Việc sử dụng các ống cannula lớn làm
tăng tỷ lệ phù nề và tụ máu.
•
Sử dụng cannula nhỏ hơn để tiêm chất
béo!
6.4.2 Mạch máu nuôi của vùng
tiếp nhận
Sự thành công của việc ghép mỡ sẽ tăng
lên khi vị trí nhận được cung cấp mạch máu
tốt [18].
Mặc dù vậy, ghép mỡ đã được nhiều tác
giả mô tả liên quan đến các khu vực phẫu
thuật có sẹo và các mô được chiếu xạ thiếu
máu cục bộ rõ ràng [19, 20].
Garza và cộng sự. đã kiểm tra kết quả
của việc ghép mỡ trên da của một con chuột
bạch. Ghép mỡ làm giảm độ dày lớp da, tăng
mật độ mạch máu và giảm hàm lượng col-
lagen. Phân tích CT cho thấy tỷ lệ sống sót
của mảnh ghép giảm đáng kể ở nhóm được
chiếu xạ khi liên quan đến nhóm không được
chiếu xạ [21].
Quan sát này có thể liên quan đến kết quả
của một nghiên cứu của Eto và cộng sự. Các
tác giả này đã chứng minh rằng chất béo được
chuyển thể hiện ba vùng lành thương: vùng
hoại tử trung tâm, vùng sống sót ở ngoại vi
và vùng tái tạo trung gian. Sự tái tạo của khu
vực trung gian là do sự cung cấp mạch máu.
Bởi vì mô được chiếu xạ cung cấp một lớp
mạch máu kém hơn trong quá trình kết hợp
mô ghép chất béo sớm, điều này có thể gây
ra tỷ lệ lưu giữ cuối cùng thấp hơn, ảnh hưởng
đến thể tích mảnh ghép sống sót cuối cùng.
Điểm quan trọng
•
Tỷ lệ sống của mỡ giảm trong trường
hợp da bị chiếu xạ.
•
Sau khi tiêm chất béo, có thể quan sát
thấy sự cải thiện làn da liên quan với các
tế bào gốc mô mỡ.
•
Có ý kiến cho rằng chất béo cũng có
thể được tiêm vào vùng được chiếu xạ,
nhưng bắt buộc phải thông báo cho
bệnh nhân về nguy cơ tỷ lệ tái hấp thu
cao và về sự cần thiết của nhiều lần tái
khám.
6.4.3 Tiêm bao nhiêu
Kato và cộng sự. gần đây đã công bố
một nghiên cứu thú vị, nhấn mạnh tầm quan
trọng của kích thước các hạt chất béo trong
mảnh ghép [22]. Như đã thảo luận trước đây,
cấu trúc hạt của chất béo không xảy ra trong
mô tự nhiên mà được tạo ra trong quá trình
thu hoạch và xử lý.
Đồng thời, điều quan trọng cần lưu ý là
tiêm là bước cuối cùng / yếu tố cuối cùng của
một chuỗi / liệu pháp điều trị. Để thu được
những hạt mỡ nhỏ, việc thu hoạch và xử lý
chất béo là không đủ. Trên thực tế, hạt nhỏ
được tiêm rất gần với các hạt khác và một
bolus lớn duy nhất được tạo ra. Đặc biệt, các
tế bào mỡ có nhiều khả năng sống sót nhất
nằm gần bề mặt của bolus hơn. Dựa trên các
phát hiện mô học, bolus này có thể được chia
thành ba phần: lớp gần nhất với bề mặt nơi
tất cả các tế bào mỡ tồn tại, lớp giữa nơi các
tế bào mỡ chết đi nhưng được thay thế bằng
các tế bào gốc tăng sinh, và một lõi trung
tâm bị chi phối bởi hoại tử, nang dầu, và xơ
hóa. Sự phân chia ranh giới của vùng sinh
tồn bên ngoài và vùng tái sinh giữa lần lượt
xảy ra ở 1–300 um và 600– 1200 um từ bề
mặt. Trước khi tái lập nguồn cung cấp máu,
các phần tử chất béo phụ thuộc phần lớn vào
sự khuếch tán đơn giản đối với các chất dinh
dưỡng. Khi đường kính của các tiểu thùy mỡ
trở nên lớn hơn, vùng hoại tử trung tâm sẽ
mở rộng theo giới hạn khuếch tán của nó.
Do đó, người ta có thể thấy rằng kích
thước của bolus tiêm cuối cùng có thể ảnh

Chương 6
Các kỹ thuật tiêm
66
hưởng đến mức độ tồn tại của vật liệu ghép.
Điểm quan trọng
•
Để tăng tỷ lệ sống của chất béo, bắt
buộc không được tiêm các phần tử chất
béo quá gần với các hạt khác.
•
Nên tiêm một lượng nhỏ chất béo bằng
cách sử dụng một cannula nhỏ, bằng
cách di chuyển ống này trên mô đệm
vùng nhận, tránh tiêm hạt quá gần với
các hạt khác.
Tham khảo thêm
1. Atashroo D, Raphel J, Chung MT, Paik
KJ, Parisi-Amon A, McArdle A, Senarath-Yapa K,
Zielins ER, Tevlin R, Duldulao C, Walmsley
GG, Hu MS, Momeni A, Domecus B, Rimsa JR,
Greenberg L, Gurtner GC, Longaker MT, Wan DC.
Studies in fat grafting: part II. Effects of injection
mechanics on material proper- ties of fat. Plast
Reconstr Surg. 2014;134(1):39–46.
2. Chung MT, Paik KJ, Atashroo DA, Hyun
JS, McArdle A, Senarath- Yapa K, Zielins ER,
Tevlin R, Duldulao C, Hu MS, Walmsley GG,
Parisi-Amon A, Momeni A, Rimsa JR, Com-
mons GW, Gurtner GC, Wan DC, Longaker MT.
Studies in fat grafting: part I. Effects of injection
technique on in vitro fat viability and in vivo volume
retention. Plast Reconstr Surg. 2014;134(1):29–
38.
3. Pearson B, Espino DM. Effect of hydration
on the frequency - dependent viscoelastic
properties of articular cartilage. Proc Inst Mech
Eng H. 2013;227:1246.
4. Davis FM, De Vita R. A nonlinear constitutive
model for stress relaxation in ligaments and
tendons. Ann Biomed Eng. 2012;40:2541–50.
5. Lee JH, Kirkham JC, McCormack MC,
Nicholls AM, Randolph MA, Austen WG Jr. The
effect of pressure and shear on autologous fat
grafting. Plast Reconstr Surg. 2013;131:1125–
36.
6. Shiffman MA, Mirrafati S. Fat transfer
techniques: the effect of harvest and transfer
methods on adipocyte viability and review of the
literature. Dermatol Surg. 2001;27:819–26.
7. Goisis M. Comparison between different
techniques. Face con- gress, London; 2016.
8. Farr ST, Trivisonno A. Differential fat
harvesting. Plast Aesthet Res. 2014;1:103–7.
9. Kirkham JC, Lee JH, Medina MA 3rd,
McCormack MC, Randolph MA, Austen WG
Jr. The impact of liposuction cannula size on
adi- pocyte viability. Ann Plast Surg. 2012;69:479–
81.
10. Erdim M, Tezel E, Numanoglu A, Sav A.
The effects of the size of liposuction cannula
on adipocyte survival and the optimum temper-
ature for fat graft storage: an experimental study.
J Plast Reconstr Aesthet Surg. 2009;62:1210–4.
11. Smith P, Adams WP Jr, Lipschitz AH,
et al. Autologous human fat grafting: effect
of harvesting and preparation techniques on
adipo- cyte graft survival. Plast Reconstr Surg.
2006;117:1836–44.
12. Amar RE, Fox DM. The facial autolo-
gous muscular injection (FAMI) procedure: an
anatomically targeted deep multiplane au-
tol- ogous fat-grafting technique using princi-
ples of facial fat injection. Aesthet Plast Surg.
2011;35(4):502–10.
13. Amar RE, Fox DM, Balin A. Can-
nulation and injection of the muscles of
facial expression: a cadaver study. Der-
matol Surg. 2010;36(3):331–8.
org/10.1111/j.1524- 4725.2009.01438.x. Epub
2010 Jan 19
14. Butterwick KJ. Fat autograft muscle in-
jection (FAMI): new tech- nique for facial vol-
ume restoration. Dermatol Surg. 2005;31(11 Pt
2):1487–95.
15. Butterwick KJ. Enhancement of the re-
sults of neck liposuction with the FAMI tech-
nique. J Drugs Dermatol. 2003;2(5):487–93.
16. Goisis M. Anatomy of fat injection, a ca-
daveric dissection demon- stration. 5CC con-
gress, Barcellona; 2016.
17. Willemsen JP, van der Lei B, Stevens HP.
The effects of platelet- rich plasma on recovery
time and aesthetic outcome in facial reju- vena-
tion: preliminary retrospective observations. Aes-
thet Plast Surg. 2014;38:1057–63.
18. Coleman SR. Facial recontouring with li-
postructure. Clin Plast Surg. 1997;24:347–67.
19. Panettiere P, Accorsi D, Marchetti L, Sgro
F, Sbarbati A. Large- breast reconstruction using
fat graft only after prosthetic recon- struction fail-
ure. Aesthet Plast Surg. 2011;35:703–8.

Quy trình PRP và tiêm cấy mỡ Nâng Cao
e-bacsy.com
67
20. Rigotti G, Marchi A, Galie M, et al. Clini-
cal treatment of radio- therapy tissue damage by
lipoaspirate transplant: a healing process medi-
ated by adipose-derived adult stem cells. Plast
Reconstr Surg. 2007;119:1409–22. discussion
1423–1404
21. Garza RM, Paik KJ, Chung MT, Duscher D,
Gurtner GC, Longaker MT, Wan DC. Studies in fat
grafting: part III. Fat grafting irradiated tissue—
improved skin quality and decreased fat graft re-
tention. Plast Reconstr Surg. 2014;134(2):249–
57.
22. Eto H, Kato H, Suga H, et al. The fate of
adipocytes after nonvas- cularized fat grafting:
evidence of early death and replacement of ad-
ipocytes. Plast Reconstr Surg. 2012;129:1081–
92.

Chương 6
Các kỹ thuật tiêm
68

69
Chương
7
e-bacsy.com
Tiêm mỡ theo từng bước
Mario Goisis
và
Sara Izzo

Chương 7
Tiêm mỡ theo từng bước
70
Một phương pháp điều trị toàn bộ khuôn
mặt với microfat được mô tả.
7.1 Vật liệu
6–12 cc Microfat để tiêm cho cả hai bên:
•
Kim 21 G
•
Một ống cannula tù cỡ 22G, dài 4 cm
Để thu hoạch và xử lý microfat, một hệ
thống tiêu chuẩn được sử dụng, cụ thể là:
Một hộp microfat (),
bao gồm một hệ thống dốc với một hệ thống
khép kín để rửa và lọc
•
4 xy lanh 60-cc
•
2 xy lanh 10-cc
•
1 xy lanh 1 cc
•
Một kim 30 G
•
Một kim 16 G
•
Một cannula Goisis đường kính 2 mm,
dài 10 cm để lấy mỡ
•
Dung dịch chlorhexidine-alcohol (2% ch-
lorhexidine glu- conate và 70% isopropyl
alcohol), drape hoặc khăn vô trùng
•
Túi đá
•
Gạc vuông 2 cm × 2 cm vô trùng
•
Băng ép che kín
Thuốc bao gồm:
• 100 cc dịch saline lạnh
• 120 cc dịch Klein lạnh
• Một lít dung dịch Klein bao gồm 800 mg
lidocain, 1 mg epinephrine, 40 MEq natri
bicarbon-ate, và 1000 cc dung dịch
nước muối.
Vị trí: Có thể thu hoạch microfat trong
một phòng mổ nhỏ / phẫu thuật y tế. Cần có
thiết bị đo oxy, đo SpO2 và một xe đẩy / hộp
dụng cụ.
Người hỗ trợ: Người hỗ trợ rất hữu ích để
chuyển các vật dụng vào khu vực thủ thuật
một cách vô trùng trong phần đầu tiên của
quy trình. Tuy nhiên, một bác sĩ duy nhất có
thể dễ dàng thực hiện toàn bộ quy trình mà
không cần trợ giúp.
7.2 Biến chứng và kiểm soát
Các biến chứng ngay lập tức (trong vòng
72 giờ sau khi tiêm) bao gồm ban đỏ thoáng
qua, phù nề, cứng da, ngứa và bầm máu.
Các biến chứng ban đầu (vài ngày đến
vài tuần sau khi tiêm) bao gồm sửa chữa quá
mức, nhiễm trùng cục bộ, hoại tử da, tái hoạt
herpes, đổi màu và các triệu chứng tại chỗ
dai dẳng (ban đỏ, phù nề, cứng da, ngứa và
tăng sắc tố).
Các biến chứng muộn hơn bao gồm tỷ lệ
tiêu mỡ và u nang cao (Hình 7.1, 7.2, 7.3, 7.4,
7.5, 7.6, 7.7, 7.8, 7.9, 7.10, 7.11, 7.12, 7.13
và 7.14).
M. Goisis (*)
Phẫu thuật viên thẩm mỹ và hàm mặt, Bệnh viện Go Easy, Milan, Italy
S. Izzo
Khoa phẫu thuật thẩm mỹ, Đại học Campania “Luigi Vanvitelli”, Naples, Italy

Quy trình PRP và tiêm cấy mỡ Nâng Cao
e-bacsy.com
71
Hình. 7.1 Ba điểm tiêm an toàn tiêu chuẩn được
đánh dấu trên da của bệnh nhân. Mũi tên màu
xanh lam cho biết cột trung tâm. Mũi tên màu đỏ
chỉ ra điểm an toàn để tiêm vào vùng tuyến lệ. Nó
nằm ở góc phần tư bên trên giữa các đường Hin-
derer: một đường nối đuôi mắt với vành bên của
miệng, đường kia đi từ cánh mũi đến bình tai. Mũi
tên màu vàng cho biết điểm an toàn để tiêm vào
vùng thái dương, nằm cách 2 cm về phía giới hạn
bên ngoài của khoang ổ mắt và 2 cm trên giới hạn
trên của cung gò má. (Được xuất bản dưới sự cho
phép của © Mario Goisis 2018. Mọi quyền được
bảo lưu)
Hình. 7.2 (a–c) 0,2 cc thuốc tê (dung dịch Klein)
được tiêm vào mỗi điểm an toàn. (Được xuất bản
dưới sự cho phép của © Mario Goisis 2018. Mọi
quyền được bảo lưu)

Chương 7
Tiêm mỡ theo từng bước
72
Hình. 7.3 Thuốc tê được tiêm vào môi trên và môi
dưới. (Được xuất bản dưới sự cho phép của ©
Mario Goisis 2018. Mọi quyền được bảo lưu)
Hình. 7.4 (a, b) Chất béo được chuyển trực tiếp từ bộ công cụ Goisis microfat
vào ống tiêm 1 cc. (Được xuất bản dưới sự cho phép của © Mario Goisis 2018.
Mọi quyền được bảo lưu)
Hình. 7.5 (a–j) Đường đi của cannula, bắt đầu từ cột trung tâm, được minh họa
ở đây. (Được xuất bản dưới sự cho phép của © Mario Goisis 2018. Mọi quyền
được bảo lưu)

Quy trình PRP và tiêm cấy mỡ Nâng Cao
e-bacsy.com
73
Hình. 7.5 (tiếp theo)

Chương 7
Tiêm mỡ theo từng bước
74
Hình. 7.6 Một lỗ vào được tạo ra bằng cách sử
dụng một kim 21G sắc nhọn. (Được xuất bản dưới
sự cho phép của © Mario Goisis 2018. Mọi quyền
được bảo lưu)
Hình. 7.7 Cannula được đưa vuông góc vào da.
(Được xuất bản dưới sự cho phép của © Mario
Goisis 2018. Mọi quyền được bảo lưu)
Hình. 7.8 (a–e) Chất béo được tiêm vào 1/3 giữa
và dưới của khuôn mặt. (Được xuất bản dưới sự
cho phép của © Mario Goisis 2018. Mọi quyền
được bảo lưu)

Quy trình PRP và tiêm cấy mỡ Nâng Cao
e-bacsy.com
75
Hình. 7.9 Đường đi của cannula trong vùng tuyến
lệ. (Được xuất bản dưới sự cho phép của © Mario
Goisis 2018. Mọi quyền được bảo lưu)
Hình. 7.10 Một lỗ vào được tạo ra bằng cách sử
dụng một kim 21G sắc nhọn. (Được xuất bản dưới
sự cho phép của © Mario Goisis 2018. Mọi quyền
được bảo lưu)
Hình. 7.11 Cannula được đưa vuông góc vào da.
(Được xuất bản dưới sự cho phép của © Mario
Goisis 2018. Mọi quyền được bảo lưu)
Hình. 7.12 Tiêm Microfar vào vùng rãnh lệ. (Sự
cho phép đã xuất bản của © Mario Goisis 2018.
Mọi quyền được bảo lưu)
Hình. 7.13 Tiêm mỡ vùng thái dương. (Được xuất
bản dưới sự cho phép của © Mario Goisis 2018.
Mọi quyền được bảo lưu)

Chương 7
Tiêm mỡ theo từng bước
76
Hình. 7.14 (a–j) Xoa bóp mạnh được áp dụng cho khu vực được điều trị. (Được
xuất bản dưới sự cho phép của © Mario Goisis 2018. Mọi quyền được bảo lưu)

77
Chương
8
e-bacsy.com
Sát thủ của mỡ và chuỗi
Mario Goisis, Sara Izzo
và
Giovanni Francesco Nicoletti

Chương 8
Sát thủ của mỡ và chuỗi
78
Quy trình Microfat bao gồm một số bước
khác nhau. Ví dụ, chúng tôi phải thu hoạch
chất béo, xử lý nó, trộn nó với prp, và cuối
cùng, đưa nó vào các vùng nhận. Bốn bước
này có thể được coi là bốn mắt xích khác
nhau của một chuỗi.
Bởi vì một chuỗi chỉ mạnh bằng liên kết
yếu nhất của nó, nên bắt buộc phải xây dựng
một quy trình tối ưu từ đầu đến cuối.
Trên thực tế, nếu một trong những liên
kết của chuỗi yếu, thì toàn bộ quy trình sẽ bị
tổn hại.
8.1 Các chiều lớn của hạt mỡ
Các hạt chất béo là những hạt cầu nguyên
vẹn của tế bào mỡ liên kết với nhau trong
một mạng lưới trung mô. Cần lưu ý rằng các
hạt chất béo không tồn tại tự nhiên trong mô
tự nhiên mà được tạo ra trong quá trình thu
hoạch.
Kato và cộng sự. gần đây đã công bố
một nghiên cứu mang tính bước ngoặt, nhấn
mạnh tầm quan trọng của kích thước các hạt
chất béo trong việc cấy ghép. Ông báo cáo
rằng trong một hạt, các tế bào mỡ có nhiều
khả năng sống sót nhất nằm gần bề mặt của
tiểu thùy nhất (Hình 8.1).
Trước khi tái lập nguồn cung cấp máu,
các phần chất béo phụ thuộc phần lớn vào
sự khuếch tán đơn giản đối với các chất dinh
dưỡng. Khi đường kính của các tiểu thùy mỡ
trở nên lớn hơn, vùng hoại tử trung tâm về
mặt lý thuyết sẽ mở rộng theo các giới hạn
khác nhau (Hình 8.1, 8.2 và 8.3).
Do đó, người ta có thể kết luận rằng kích
thước của các hạt chất béo cuối cùng có thể
ảnh hưởng đến mức độ tồn tại của vật liệu
ghép [1].
Điểm quan trọng
•
Để tăng tỷ lệ sống của chất béo, bắt buộc
phải thu được các hạt chất béo nhỏ.
Dung dịch
•
Sử dụng cannula thu hoạch với kích
thước cổng nhỏ
M. Goisis (*)
Phẫu thuật viên thẩm mỹ và hàm mặt, Bệnh viện Go Easy, Milan, Italy
S. Izzo · G. F. Nicoletti
Khoa phẫu thuật thẩm mỹ, Đại học Campania “Luigi Vanvitelli”, Naples, Italy
Hình. 8.1 Mối quan hệ giữa đường kính của hạt
chất béo và sự tồn tại của chất béo. Bóc tách giải
phẫu thể hiện việc tiêm chất béo vào cơ và sâu.
Chất béo có màu xanh lá cây trước khi tiêm. (Được
xuất bản dưới sự cho phép của © Mario Goisis
2018. Mọi quyền được bảo lưu)

Quy trình PRP và tiêm cấy mỡ Nâng Cao
e-bacsy.com
79
Hình. 8.2 Mối quan hệ giữa đường kính của hạt
mỡ và sự tồn tại của mỡ. Chất béo được tiêm bằng
cách sử dụng các cannula có đường kính lớn.
(Được xuất bản dưới sự cho phép của © Mario
Goisis 2018. Mọi quyền được bảo lưu)
Hình 8.3 Kích thước khác nhau của các hạt chất
béo. (Được xuất bản dưới sự cho phép của © Ma-
rio Goisis 2018. Mọi quyền được bảo lưu)
8.2 Áp lực âm
Shiffman và Mirrafati đã chứng minh rằng
tổn thương tế bào là do áp suất chân không
vượt quá 700 mmHg [2]. Cheriyan và cộng
sự. đã nghiên cứu ảnh hưởng của áp suất thu
hoạch đối với tỷ lệ sống sót của mỡ và khả
năng tồn tại của các tế bào sống sót[3].
Quá trình hút mỡ được thực hiện ở mức
áp suất cao (−760 mmHg) và mức áp suất
thấp (−250 mmHg). Sự sống sót của tế bào
mỡ và khả năng tồn tại của tế bào sau đó
đã được đo lường. Khả năng tồn tại của mỡ
sau khi thu hoạch cao hơn 47% khi được hút
ở áp suất thấp so với mức áp suất cao hơn.
Ngoài ra, khả năng tồn tại của tế bào ở 7 ngày
cao hơn đáng kể khi hút áp suất thấp được
áp dụng.
Nhận định này đã được xác nhận bởi
công trình của Nguyen và cộng sự. Điều đó
đã chứng minh rằng chỉ 10% các phần mỡ
sống sót sau khi hút mỡ ở 760 mmHg [4].
Mojallal và cộng sự. đã đánh giá ảnh
hưởng của áp suất lên sản lượng tế bào phân
đoạn mạch đệm (SVF) liên quan đến kỹ thuật
hút. Sáu điều kiện thu hoạch khác nhau đã
được thử nghiệm: hút bằng tay sử dụng ống
tiêm 10 mL, hút tường, hút bằng bơm ở −350,
hút bằng bơm ở −700 mmHg, và hút mỡ có
trợ lực ở −350 và −700 mmHg. Năng suất tế
bào với áp suất −350 mmHg, có hỗ trợ hoặc
không, lớn hơn năng suất thu được ở −700
mmHg và cao hơn đáng kể so với hút bằng
bơm tiêm (p <0,05). Kết luận là −350 mmHg
làm tăng số lượng tế bào SVF được thu hoạch
[5].
Lee và cộng sự. đã kiểm tra tác động của
áp lực lên một mô hình chuột bạch. Áp suất
dương được áp dụng để hút mỡ lên đến 6
atm trong tối đa 3 phút và sau đó được tiêm
vào hai bên sườn của chuột. Việc áp dụng
các mức áp suất dương không tạo ra sự khác
biệt đáng kể về trọng lượng mảnh ghép hoặc
mô học ở 4 tuần.
Điểm quan trọng
•
Thừa thải áp suất chân không sẽ phá
hủy các tế bào mỡ và ADSC.
Dung dịch
•
Sử dụng áp suất thấp trong quá trình
hút, đặc biệt bằng cách sử dụng các
ống tiêm nhỏ hoặc đặc hiệu (ống tiêm
VacLok)
8.3 Lipid
Lipid tự do ngoại bào được giải phóng từ
các tế bào mỡ bị vỡ. Vật liệu này được phá
hủy bởi các tế bào thực bào mô, và có thể
Đường kính tối đa
của hạt mỡ:
2,4 mm
0,13 ml

Chương 8
Sát thủ của mỡ và chuỗi
80
gây ra phản ứng viêm. Nang lipid có thể được
tạo ra bởi các tế bào viêm trong quá trình
phản ứng của vật thể lạ. Để tránh những vấn
đề này, lipid thường xuyên được loại bỏ khỏi
các mảnh ghép được chuẩn bị bằng phương
pháp ly tâm [6].
Zhu và cộng sự. cho thấy rằng lipid ngoại
bào chiếm khoảng 12% tổng thể tích mảnh
ghép trong các mảnh ghép được chuẩn bị
bằng cách ly tâm và khoảng 8% các mảnh
ghép được chuẩn bị bằng cách lắng trọng lực,
với sự giữ lại đáng kể của lipid trong mảnh
ghép được chứng minh bằng cách kiểm tra
ở phạm vi vi mô, Ngược lại, tồn tại dầu giảm
xuống dưới 1% trong các mảnh ghép được
chuẩn bị bằng cách rửa và lọc [7].
Điểm quan trọng
•
Lipid gây viêm và phản ứng với ngoại vật.
Dung dịch
•
Loại bỏ các lipids. Hệ thống hiệu quả
nhất là rửa và lọc.
8.4 Tế bào máu thoát mạch
Sau khi được ghép, các tế bào máu thoát
mạch được làm sạch bằng quá trình viêm có
thể dẫn đến tổn thương bàng hệ và mất thể
tích mảnh ghép (Hình. 8.4). Zhu và cộng sự.
cho thấy rằng sự kết dính và lắng đọng loại
bỏ khoảng 50-60% các tế bào hồng cầu và
bạch cầu [7]. Dữ liệu tương tự đã được báo
cáo bởi Rohrich và cộng sự và Kurita và cộng
sự [8, 9].
Để so sánh, rửa kèm theo lọc loại bỏ hơn
95% cả hai loại tế bào máu.
Điểm quan trọng
•
Các tế bào máu thoát mạch được làm
sạch bằng quá trình viêm có thể dẫn
đến tổn thương bàng hệ và mất thể tích
mảnh ghép.
Dung dịch
•
Để loại bỏ các tế bào máu thoát mạch,
hệ thống hiệu quả nhất bao gồm ly tâm
cùng với rửa và lọc.
8.5 Haemoglobin tự do
Mức độ hemoglobin tự do được cho là
thúc đẩy quá trình viêm nhiễm và làm trung
gian các con đường khác nhau dẫn đến sự
suy giảm nitric oxide và tạo ra các loài phản
ứng oxy hóa. Villaboa và cộng sự. đã chứng
minh rằng sau khi rửa bằng dung dịch muối
isotonic, các mô mỡ đã được phục hồi về các
điều kiện sinh lý tối ưu thích hợp cho việc tái
cấy ghép [10] (Hình. 8.5).
Hình. 8.4 Chất béo sau khi thu hoạch: thành phần
tế bào máu thoát mạch có thể nhìn thấy ở phần
dưới của ống tiêm. (Được xuất bản dưới sự cho
phép của © Mario Goisis 2018. Mọi quyền được
bảo lưu)
Hình. 8.5 Kích thước khác nhau của hạt mỡ

Quy trình PRP và tiêm cấy mỡ Nâng Cao
e-bacsy.com
81
Điểm quan trọng
•
Hemoglobin tự do làm trung gian cho
các con đường khác nhau dẫn đến sự
cạn kiệt oxit nitric và tạo ra các loại phản
ứng oxy hóa.
Dung dịch
•
Để loại bỏ hemoglobin tự do, rửa cùng
với lọc chứng tỏ là một phương pháp rất
hiệu quả.
8.6 Vi khuẩn
Nhiễm trùng là những biến chứng có thể
xảy ra khi ghép mỡ. Phương pháp xử lý khép
kín tránh tiếp xúc với chất béo, giảm nguy cơ
tiếp xúc với vi khuẩn [11].
Điểm quan trọng
•
Vi khuẩn có thể tạo ra nhiễm trùng.
Dung dịch
•
Để giảm tiếp xúc với vi khuẩn, hãy sử
dụng các phương pháp thu hoạch, xử lý
và tiêm khép kín.
8.7 Tê tại chỗ
Girard và cộng sự. đã đánh giá vai trò của
lidocain. Đặc biệt, quá trình xâm nhập được
thực hiện trên cùng một bệnh nhân với hai
dung dịch phát quang khác nhau: một bên
bụng được thâm nhập bằng dung dịch chứa
1 mg / L adena- line trên 1 L Ringer lactate
(RL), nhưng không có lido - caine; phía bên
kia được thâm nhập với 0,8 mg / mL lidocain
(40 mL lidocain 2% và adrenalin 1 mg / L trên
1 L RL).
Mô mỡ sau đó được xử lý bằng cách gạn,
rửa và ly tâm [12].
Sau đó, từng loại mô mỡ trong số hai loại
mô mỡ này được tiêm vào những con chuột
bị suy giảm miễn dịch. Các mảnh ghép được
thu thập sau 1 tháng và được phân tích mô
học bằng phương pháp đánh giá chi tiết. Sau
khi sử dụng lidocain, chất tách chiết tạo ra
mô mỡ chất lượng cao với tỷ lệ tái hấp thu
cao và hình thành không bào dầu. Mặt khác,
nó đã được chứng minh rằng chỉ cần rửa mô
dính một lần và sử dụng gạn lọc mà không
cần ly tâm, có thể thu được hiệu quả ghép
tương đương với hiệu quả của ly tâm đơn
thuần. Công trình này xác nhận tác dụng của
thuốc gây tê cục bộ trên thực tế (trước đây
đã chứng minh trong ống nghiệm).
Điểm quan trọng
•
Sự tiếp xúc của mỡ với thuốc gây tê tại
chỗ trong nhiều giờ dẫn đến mô ghép
mỡ kém chất lượng với tỷ lệ tái hấp thu
cao và hình thành không bào dầu.
Giải pháp
•
Không được gây tê cục bộ tại nơi thu
hoạch.
•
Để loại bỏ chất gây tê tại chỗ khỏi mảnh
ghép. Hệ thống hiệu quả nhất là rửa kèm
theo lọc.
•
Chỉ tiêm một lượng nhỏ thuốc gây tê cục
bộ vào vị trí nơi nhận.
8.8 Phân bố bất thường của
nước
Lượng nước có trong mảnh ghép mỡ tổn
hại đến khả năng lưu giữ mảnh ghép, vì nước
được cơ thể hấp thụ nhanh chóng sau khi
cấy ghép. Các bác sĩ phẫu thuật thường đề
phòng hiện tượng này bằng cách lấp đầy vị
trí mảnh ghép. Điều này có thể gây ra vấn đề
trong trường hợp giới hạn thể tích tại vị trí cấy
ghép. Mặc dù vậy, nó là bắt buộc để có thể tự
mình sử dụng một hệ thống tiêu chuẩn hóa tỷ
lệ phần trăm của lượng chất lỏng nước. Trên
thực tế, rõ ràng việc sử dụng mảnh ghép có
tỷ lệ nước thấp ở một bên mặt và mảnh ghép
có tỷ lệ nước cao ở mặt kia, rõ ràng sẽ dẫn
đến tình trạng không đối xứng.
Zhu và cộng sự. cho thấy rằng ly tâm và
xử lý bằng cách rửa kèm theo lọc bằng hệ
thống Puregraft là những cách hiệu quả nhất
để giảm lượng chất lỏng trong nước trong
mảnh ghép. Điều này phù hợp với dữ liệu từ
Kurita và cộng sự, người đã chỉ ra rằng ly tâm
làm ngưng tụ mô, do đó làm giảm hàm lượng
chất lỏng trong nước [7, 8].

Chương 8
Sát thủ của mỡ và chuỗi
82
Điểm quan trọng
•
Lượng nước chứa trong mảnh ghép
chất béo làm ảnh hưởng đến việc giữ lại
mảnh ghép, vì nước nhanh chóng được
hấp thụ lại. Sự phân bố nước không đều
có thể dẫn đến sự không đối xứng trong
khu vực được ghép.
Giải pháp
•
Sử dụng một hệ thống đảm bảo loại bỏ
đồng nhất phần chất lỏng từ mô ghép
chất béo. Rửa kèm theo lọc là một
phương pháp rất hiệu quả để loại bỏ.
8.9 Lực đứt gãy
Đối với quá trình cấy mỡ, lực đứt gãy tác
động lên chất béo khi nó được đẩy qua một
số loại ống, chẳng hạn như ống cannula. Đối
với vận tốc của lực đứt gãy tỷ lệ với độ nhớt
của chất béo. Khi độ nhớt cao, lực đứt gãy
cao cũng sẽ được tạo ra. Để chất béo tiếp
xúc với lực đứt gãy cao sẽ dẫn đến hư hỏng
không thể phục hồi và tính toàn vẹn cơ học
của chất béo không thể phục hồi hoàn toàn
sau tổn thương này.
Điểm quan trọng
•
Để chất béo tiếp xúc với lực đứt gãy cao
sẽ dẫn đến thiệt hại không thể phục hồi.
Giải pháp
•
Sử dụng hệ thống đảm bảo độ nhớt thấp
và lực đứt gãy thấp
8.10 Tiêm tốc độ cao
Tốc độ dòng chảy cao đã được chứng
minh là có hại cho chất béo vì chúng gây ra
lực đứt gãy lớn hơn. Nói cách khác, tốc độ
dòng chảy theo thứ tự 0,5–1 cc / s do đó đã
được Lee và cộng sự khuyến nghị. để tối ưu
hóa khả năng tồn tại của chất béo [13].
Trong cùng một bài báo, các tác giả, xác
nhận công trình của Shiffman và Mirrafati, đã
chứng minh rằng tốc độ dòng chảy cao làm
hỏng chất béo đáng kể khi đánh giá bằng mô
học [2].
Tại hội nghị FACE, Goisis và cộng sự trình
bày một nghiên cứu về lực đứt gãy trong quá
trình rửa, lọc và tiêm chất béo bằng hệ thống
Goisis và so sánh nó với kỹ thuật Coleman và
công nghệ Lipogems.
Việc giảm độ nhớt của chất béo bằng
cách sử dụng hệ thống Goisis (tiêm với can-
nula 22 G) thấp hơn đáng kể so với mức giảm
thu được khi sử dụng Lipogems (tiêm với
cannula 25G) và Coleman (tiêm với hệ thống
cannula 22 G [14].
Điểm quan trọng
•
Tốc độ dòng chảy cao làm hỏng chất
béo, gây ra nhiều lực đứt gãy hơn.
Giải pháp
•
Tiêm chậm!
8.11 Kích thước các cổng của
cannula thu hoạch
Kích thước của cổng của một ống cannu-
la ảnh hưởng nghiêm trọng đến độ nhớt của
tế bào mỡ mảnh ghép. Đặc biệt, việc sử dụng
kích thước cổng lớn hơn làm tăng độ nhớt
của mảnh ghép [15–17].
Trong trường hợp có độ nhớt cao, chất
béo được đẩy qua một ống cannula nhỏ sẽ
tạo ra lực đứt gãy cao. Điều này sẽ dẫn đến
hư hỏng không thể phục hồi và tính toàn vẹn
cơ học của chất béo không thể phục hồi hoàn
toàn từ hư hỏng này.
Điểm quan trọng
•
Sử dụng kích thước cổng lớn hơn khi thu
hoạch chất béo làm tăng nguy cơ tổn
thương mô ghép khi tiêm.
Giải pháp
•
Sử dụng các cannula thu hoạch với kích
thước cổng nhỏ hơn.
8.12 Tiêm mỡ với kim tiêm sắc
nhọn
Một tác phẩm của Smith et al chỉ ra rằng
việc sử dụng kim để tiêm có thể có hại cho

Quy trình PRP và tiêm cấy mỡ Nâng Cao
e-bacsy.com
83
chất béo hơn so với việc sử dụng cannula do
có thể gây ra lực đứt gãy lớn hơn [18].
Điểm quan trọng
•
Sử dụng kim làm tăng tổn thương cho
chất béo.
Giải pháp
•
Giảm sử dụng kim nhọn để tiêm chất
béo.
8.13 Tiêm mỡ quá gần bề mặt
Amar và cộng sự. đã mô tả một kỹ thuật
trẻ hóa bằng ghép mỡ nhắm vào các cấu trúc
giải phẫu cụ thể và các giường mô [19].
Họ gọi nó là kỹ thuật “tiêm cơ tự thân
trên khuôn mặt” (FAMI). Theo ý kiến của họ,
có thể tối đa hóa sự sống sót của tế bào mỡ
bằng cách đặt nó gần hoặc trong các cơ biểu
hiện trên khuôn mặt. Chất béo được chuyển
đến ống tiêm 1 cc và được gắn vào một trong
chín cannula khác nhau có hình dạng phù hợp
với các hoạt động của cơ xương. Các nhóm
cơ được tiêm 1–3 cc mỡ theo kiểu ngược
dòng, từ chỗ chèn đến gốc hoặc ngược lại.
Mỗi ống tiêm được làm rỗng trong một đến
ba lần tiêm. Ngoại lệ duy nhất là vùng dưới ổ
mắt, nơi có thể tiêm không quá 0,5 cc vì nguy
cơ có nốt sần và u nang. Cơ sở lý luận của kỹ
thuật FAMI là chất béo sẽ tồn tại tối ưu khi
được ghép vào một đám rối mạch máu cơ
phong phú.
Các gợi ý sau phẫu thuật dựa trên nguyên
tắc “Càng ít chuyển động, thì việc ghép cuối
cùng sẽ càng thành công”. Vì lý do này, bệnh
nhân nên tránh, không chỉ cười hoặc thô
bạo, cử động khuôn mặt rõ ràng mà còn nói
chuyện dưới bất kỳ hình thức nào. Bệnh nhân
nên tránh xuất hiện trước công chúng đòi
hỏi tương tác bằng giọng nói, cũng như nói
chuyện điện thoại.
Hạn chế của căng cơ mặt này cũng ảnh
hưởng đến chế độ ăn uống của bệnh nhân,
chế độ ăn này sẽ loại bỏ thức ăn cứng như
táo hoặc bánh mì cứng hơn. Thay vào đó,
bệnh nhân nên ăn những thức ăn mềm hơn,
chẳng hạn như chuối, giảm đau để tránh
những thức ăn gây căng thẳng quá mức cho
hàm
[20]
(
fami_ step_step.php).
Goisis và cộng sự. đã mô tả việc tiêm
chất béo bằng một ống tiêm 22G vào một
mặt phẳng sâu tiêm bắp. Đặc biệt, bằng cách
sử dụng một ống tiêm linh hoạt và một điểm
tiêm duy nhất, có thể đưa chất béo vào mặt
phẳng sâu này ở 1/3 giữa và dưới của khu-
ôn mặt. Kỹ thuật tiêm đã được mô tả bằng
phương pháp bóc tách [21].
Điểm quan trọng
•
Việc tiêm chất béo vào đám rối mạch
máu cơ phong phú làm tăng khả năng
sống sót của tế bào.
Giải pháp
•
Tiêm chất béo vào mặt phẳng sâu, gần
hoặc vào mặt phẳng cơ.
8.14 Tiêm mỡ với Cannula
đường kính lớn
Trong kỹ thuật Coleman cổ điển, việc tiêm
chất béo được hình thành bằng cách sử dụng
các cannula Coleman (đường kính 1–1,5
mm) mà các giọt nhỏ được tiêm vào không
gian ba chiều. Từ 10 đến 25 cc chất béo được
tiêm vào các mặt phẳng nông và sâu hơn ở
mỗi bên của khuôn mặt. Nói chung, tiêm bề
mặt được thực hiện ở vùng thái dương (phía
trên cân cơ thái dương nông vì lý do mạch
máu), vùng chân chim, và phần trước của má
(để cho phép hỗ trợ trực tiếp da ở hai khu vực
này). Tiêm vào các mặt phẳng sâu hơn được
thực hiện trong trường hợp vùng gờ gò má,
mỡ dưới cơ vòng ổ mắt (SOOF), rãnh lệ, phần
trung tâm của mặt giữa, nếp gấp mũi - môi và
nếp gấp miệng.
Đường kính lớn của cannula, kết hợp với kỹ
thuật đa tầng, thường liên quan đến việc sản
sinh phù nề và tụ máu. Willemsen và cộng
sự. báo cáo rằng những bệnh nhân trải qua
phương pháp bơm mỡ bằng kỹ thuật Cole-
man mất 18,9 ngày để tiếp tục các hoạt động
xã hội của họ, giảm xuống còn 13,2 ngày khi
chất béo được kết hợp với PRP (Hình 8.2).
Mặc dù vậy, không gian chết trong giai
đoạn hồi phục sẽ tăng lên khi sử dụng các

Chương 8
Sát thủ của mỡ và chuỗi
84
cannula lớn. Khoảng trống này sẽ lấp đầy
các mô sẹo bằng huyết thanh và làm giảm
sự tích hợp tế bào [22].
Goisis và cộng sự. [21] đề nghị tiêm một
lớp sâu mỏng với một ống cannula 22G. Đặc
biệt, chất béo được thu hoạch bằng cách sử
dụng Goisis microcannula có độ nhớt thấp.
Bởi vì điều này, có thể tiêm nó với một ống
cannula nhỏ tạo ra một mức độ lực đứt gãy
thấp. Goisis và cộng sự. so sánh độ nhớt
trước khi tiêm và sau tiêm; sự thay đổi được
chứng minh là nhỏ nhất. Việc duy trì độ nhớt
là một minh chứng cho việc duy trì tính toàn
vẹn của chất béo.
Việc sử dụng một ống cannula nhỏ tạo
ra một không gian chết nhỏ, làm giảm các
mô sẹo cản trở quá trình tích hợp tế bào. Quá
trình tiêm vào mặt phẳng sâu diễn ra trong
khoảng gần
với một đám rối mạch máu cơ phong
phú. Kỹ thuật này rất đơn giản và dựa trên
bốn điểm chính của đường vào. Những điểm
này giúp bạn có thể tiêm vùng gò má, má,
nếp gấp mũi môi, môi, cằm và tuyến lệ.
Điểm quan trọng
•
Việc thải bỏ các hạt mỡ có kích thước
lớn trong quá trình thu hoạch có nghĩa
là phải sử dụng các cannula lớn để bơm
chất béo vào.
•
Việc sử dụng các cannula lớn làm tăng
không gian chết và giảm sự sống sót
của các tế bào.
•
Việc sử dụng các ống cannula lớn làm
tăng phù nề và u máu.
Giải pháp
•
Thu hoạch các hạt mỡ có kích thước
nhỏ và bơm chúng bằng các ống can-
nula nhỏ.
8.15 Tiêm mỡ vào khu vực
giảm tưới máu
Sự thành công của việc ghép mỡ tăng lên
khi có các vị trí nhận được mạch máu tốt [23].
Mặc dù vậy, nhiều tác giả báo cáo việc
ghép mỡ trong các lĩnh vực phẫu thuật có
sẹo và trong các mô được chiếu xạ rõ ràng là
thiếu máu nuôi [24].
Trong những môi trường này, nhiều báo
cáo đã chứng minh chất lượng da được cải
thiện sau khi ghép mỡ [25].
Garza và cộng sự. đã nghiên cứu ảnh
hưởng của việc ghép mỡ trên da được chiếu
xạ ở một con chuột bạch. Ghép mỡ làm tăng
mật độ mạch máu, giảm độ dày lớp bì và
giảm hàm lượng collagen. Đánh giá mô học
của các mảnh ghép không có sự khác biệt
về chất lượng giữa nhóm chiếu xạ và không
chiếu xạ. Mặc dù vậy, phân tích CT cho thấy
tỷ lệ lưu giữ mảnh ghép giảm đáng kể ở nhóm
được chiếu xạ so với nhóm không được chiếu
xạ [26].
Điểm quan trọng
•
Tỷ lệ sống của mỡ giảm trong trường
hợp da bị chiếu xạ.
•
Sau khi tiêm chất béo, có thể quan sát
thấy sự cải thiện của da liên kết với tế
bào gốc mô mỡ.
•
Người ta đề nghị rằng chất béo cũng
được tiêm vào khu vực được chiếu xạ
nhưng bắt buộc phải thông báo cho
bệnh nhân về tỷ lệ tái tạo cao và nhu cầu
tái khám nhiều lần.
8.16 Tiêm mỡ lượng quá lớn
Kato và cộng sự. gần đây đã công bố
một nghiên cứu mang tính bước ngoặt, nhấn
mạnh tầm quan trọng của kích thước các hạt
chất béo trong mảnh ghép. Như đã thảo luận
trước, cấu trúc hạt của chất béo không xảy ra
trong mô tự nhiên, mà được tạo ra, đúng hơn,
trong quá trình thu hoạch và xử lý [1].
Đồng thời, điều quan trọng cần lưu ý tiêm
là mắt xích thứ ba trong một chuỗi duy nhất.
Không đủ để thu được các hạt chất béo nhỏ
bằng cách thu hoạch và xử lý. Hạt nhỏ thực
sự được tiêm rất gần với các hạt khác, do đó
tạo ra một bolus lớn duy nhất. Đặc biệt, các
tế bào mỡ có nhiều khả năng sống sót nhất
nằm gần bề mặt của bolus hơn. Dựa trên
các phát hiện mô học, bolus này có thể được

Quy trình PRP và tiêm cấy mỡ Nâng Cao
e-bacsy.com
85
chia thành ba phần: lớp gần nhất với bề mặt
nơi tất cả các tế bào mỡ sống sót, lớp giữa
nơi các tế bào mỡ chết đi nhưng được thay
thế bằng các tế bào gốc tăng sinh, và một lõi
trung tâm bị chi phối bởi hoại tử, nang dầu,
và xơ hóa. Phân định ranh giới của khu vực
bên ngoài còn sót lại và vùng giữa tái sinh lần
lượt xảy ra ở 1–300 um và 600– 1200 um so
với bề mặt. Trước khi tái lập nguồn cung cấp
máu, các phần tử chất béo phụ thuộc phần
lớn vào sự khuếch tán đơn giản để tìm chất
dinh dưỡng. Khi đường kính của các tiểu thùy
mỡ trở nên lớn hơn, vùng hoại tử trung tâm
sẽ mở rộng theo giới hạn khuếch tán của nó.
Do đó, người ta có thể thấy rằng kích
thước của bolus tiêm cuối cùng có thể ảnh
hưởng đến mức độ tồn tại của vật liệu ghép.
Điểm quan trọng
•
Để tăng tỷ lệ sống của chất béo, bắt
buộc không được tiêm các phần tử chất
béo quá gần với các phần tử khác.
Giải pháp
•
Sử dụng một ống cannula nhỏ để tiêm
một lượng nhỏ chất béo, bằng cách di
chuyển cannula trên vùng nhận và tránh
các hạt tiêm quá gần nhau.
Tham khảo thêm
1. Eto H, Kato H, Suga H, Aoi N, Doi K,
Kuno S, Yoshi- mura K. The fate of adipocytes
after nonvascularized fat grafting: evidence
of early death and replacement of adipo-
cytes. Plast Reconstr Surg. 2012;129:1081–
92.
2. Shiffman MA, Mirrafati S. Fat transfer
techniques: the effect of harvest and transfer
methods on adipocyte viability and review of
the literature. Dermatol Surg. 2001;27:819–
26.
3. Cheriyan T, Kao HK, Qiao X, Guo L. The
effect of harvest pressure on adipose surviv-
al. Plast Reconstr Surg. 2014;133(6):1365–8.
4. Nguyen P, Desouches C, Gay A, Hauti-
er A, Magalon
G. Development of micro-injection as an
innovative autologous fat graft technique: the
use of adipose tissue as dermal filler. J Plast
Reconstr Aesthet Surg. 2012;65:1692–9.
5. Mojallal A, Auxenfans C, Lequeux C,
Braye F, Damour
O. Influence of negative pressure when
harvesting adipose tissue on cell yield of
the stromal-vascular fraction. Biomed Mater
Eng. 2008;18(4-5):193–7.
6. Pu LL, Coleman SR, Cui X, Fergu-
son RE Jr, Vasconez HC. Autologous fat
grafts harvested and refined by the Cole-
man technique: a comparative study. Plast
Reconstr Surg. 2008;122:932–7.
7. Zhu M, Cohen SR, Hicok KC, Shanah-
an RK, Strem BM, Yu JC, Arm DM, Fraser JK.
Comparison of three different fat graft pre-
pa- ration methods: gravity separation, cen-
trifugation, and simultane- ous washing with
filtration in a closed system. Plast Reconstr
Surg. 2013 Apr;131(4):873–80.
8. Kurita M, Matsumoto D, Shigeura T, et
al. Influences of centrifuga- tion on cells and
tissues in liposuction aspirates: optimized
cen- trifugation for lipotransfer and cell iso-
lation. Plast Reconstr Surg. 2008;121:1033–
41.
9. Rohrich RJ, Sorokin ES, Brown SA.
In search of improved fat transfer viability:
a quantitative analysis of the role of centrif-
uga- tion and harvest site. Plast Reconstr
Surg. 2004;113:391–5.
10. Dos-Anjos Vilaboa S, Llull R, Mendel
TA. Returning fat grafts to physiologic con-
ditions using washing. Plast Reconstr Surg.
2013 Aug;132(2):323e–6e.
11. Yoshimura K, Coleman SR. Complica-
tions of fat grafting: how they occur and how
to find, avoid, and treat them. Clin Plast Surg.
2015;42(3):383–8.
12. Girard AC, Mirbeau S, Gence L. Ef-
fect of washes and centrifuga- tion on the
efficacy of lipofilling with or without local
anesthetic. Plast Reconstr Surg Glob Open.
2015;3(8):e496.
13. Lee JH, Kirkham JC, McCormack

Chương 8
Sát thủ của mỡ và chuỗi
86
MC, Nicholls AM, Randolph MA, Austen WG
Jr. The effect of pressure and shear on au-
tologous fat grafting. Plast Reconstr Surg.
2013;131:1125–36.
14. Goisis M. Comparison between dif-
ferent techniques. Face con- gress, London;
2016.
15. Farr ST, Trivisonno A. Differential fat
harvesting. Plast Aesthet Res. 2014;1:103–7.
16. Kirkham JC, et al. The impact of lipo-
suction cannula size on adipo- cyte viability.
Ann Plast Surg. 2012;69:479–81.
17. Erdim M, Tezel E, Numanoglu A, Sav
A. The effects of the size of liposuction can-
nula on adipocyte survival and the optimum
temper- ature for fat graft storage: an experi-
mental study. J Plast Reconstr Aesthet Surg.
2009;62:1210–4.
18. Smith P, Adams WP Jr, Lipschitz AH,
et al. Autologous human fat grafting: effect
of harvesting and preparation techniques on
adipo- cyte graft survival. Plastic Reconstr
Surg. 2006;117:1836–44.
19. Amar RE, Fox DM. The facial autolo-
gous muscular injection (FAMI) procedure:
an anatomically targeted deep multiplane
autol- ogous fat-grafting technique using
principles of facial fat injection. Aesthet Plast
Surg. 2011;35(4):502–10.
20. Amar RE, Fox DM, Balin A. Cannu-
lation and injection of the muscles of fa-
cial expression: a cadaver study. Derma-
tol
Surg.
2010;36(3):331–8.

org/10.1111/j.1524-4725.2009.
21. Goisis M. Anatomy of fat injection, a
cadaveric dissection demon- stration. 5cc
congress, Barcellona, 2016.
22. Willemsen J, van der Lei B, Vermeu-
len K, Stevens H. The effects of platelet-rich
plasma on recovery time and aesthetic out-
come in facial rejuvenation: preliminary
retrospective observations. Aesthetic Plast
Surg. 2014;38:1057–63.
23. Del Vecchio D, Rohrich RJ. A clas-
sification of clinical fat graft- ing: different
problems, different solutions. Plast Reconstr
Surg. 2012;130:511–22.
24. Salgarello M, Visconti G, Farallo E.
Autologous fat graft in radiated tissue prior
to alloplastic reconstruction of the breast:
report of two cases. Aesthet Plast Surg.
2010;34:5–10.
25. Phulpin B, Gangloff P, Tran N, Bravetti
P, Merlin JL, Dolivet
G. Rehabilitation of irradiated head and
neck tissues by autologous fat transplanta-
tion. Plast Reconstr Surg. 2009;123:1187–
97.
26. Garza RM, Paik KJ, Chung MT, Dus-
cher D, Gurtner GC, Longaker MT, Wan DC.
Studies in fat grafting: part III. Fat grafting
irradiated tissue—improved skin quality and
decreased fat graft retention. Plast Reconstr
Surg. 2014;134(2):249–57.

87
Chương
9
e-bacsy.com
So sánh
các kỹ thuật khác nhau
của cấy ghép mỡ
Mario Goisis, Sara Izzo, Andrea
Sbarbati, Giamaica Conti
và
Giovanni Francesco Nicoletti

Chương 9
So sánh các kỹ thuật khác nhau của cấy ghép mỡ
88
Một chuỗi chỉ mạnh bằng liên kết yếu
nhất của nó.
Pala di Brera nổi tiếng (còn được gọi là
Bàn thờ Montefeltro hoặc Bàn thờ Brera),
màu sơn trên gỗ, được vẽ vào năm 1472–
1474 bởi bậc thầy Phục hưng người Ý Piero
della Francesca (Hình 9.1 và 9.2).
Ở trung tâm của bức tranh, được treo
bằng một sợi dây xích từ trần nhà hình vỏ sò,
là một quả trứng, biểu tượng của sự bất tử
và tái sinh. Chúng tôi thích nghĩ về việc ghép
chất béo như thể nó là chuỗi được mô tả trong
Pala. Trên thực tế, trong quá trình chuyển mỡ,
chúng ta có 4 bước khác nhau: lấy mỡ, xử lý
mỡ, trộn mỡ với PRP và / hoặc tế bào gốc, và
tiêm mỡ vào vị trí nhận mỡ. Bốn bước này có
thể được so sánh với bốn liên kết khác nhau
của một chuỗi (Hình.9.3).
Do đó, bắt buộc phải thiết kế một quy
trình tối ưu từ đầu đến cuối, bởi vì một chuỗi
chỉ mạnh bằng mắt xích yếu nhất của nó.
Nếu một trong các liên kết của chuỗi
yếu, thì toàn bộ chuỗi sẽ bị ảnh hưởng. Trong
trường hợp chuỗi Piero’s, trứng sẽ rụng. Trong
trường hợp truyền chất béo, các tế bào mỡ sẽ
không tồn tại và sẽ không tái tạo ở vị trí tiếp
nhận (Hình.9.4).
9.1 Tính tích hợp của các tế bào
tạo mỡ
Ghép có số lượng tế bào mỡ nguyên vẹn
lớn nhất sẽ có cơ hội bền lâu dài nhất.
Chất lượng của quy trình ghép có thể
được đánh giá theo nhiều quan điểm.
Điểm đầu tiên là đảm bảo duy trì tính
toàn vẹn và khả năng sống sót của tế bào
Hình. 9.1 Pala di Brera nổi tiếng. (Được xuất bản
bởi sự cho phép của © Mario Goisis 2018. Mọi
quyền được bảo lưu)
mỡ được chuyển giao. Yếu tố này được Peer
nhấn mạnh lần đầu tiên trong tác phẩm mang
tính bước ngoặt của ông vào năm 1955, và lý
thuyết của ông được gọi là “lý thuyết tồn tại
của tế bào”. Theo lý thuyết này, mảnh ghép
với số lượng tế bào mỡ nguyên vẹn nhất sẽ
có cơ hội bền lâu dài nhất [1].
Nhiều sự kiện xảy ra trong quá trình thu
hoạch, xử lý và tiêm chất béo có thể phá vỡ
các tế bào mỡ.
M. Goisis (*)
Phẫu thuật viên thẩm mỹ và hàm mặt, Bệnh viện Go Easy, Milan, Italy
S. Izzo · G. F. Nicoletti
Khoa phẫu thuật thẩm mỹ, Đại học Campania “Luigi Vanvitelli”, Naples, Italy
A. Sbarbati · G. Conti
Khoa y học thần kinh, Y sinh và vận động, Phân môn giải phẫu và mô học, Đại học Verona,Verona,
Italy

Quy trình PRP và tiêm cấy mỡ Nâng Cao
e-bacsy.com
89
Ví dụ, nó là bắt buộc để tránh có quá
nhiều áp suất âm.
Đặc biệt, về ảnh hưởng của điều này đối
với việc ghép mỡ, nhiều tác giả đã báo cáo
rằng một lượng lớn sự phá hủy tế bào đã xảy
ra khi áp suất âm vượt quá 700 mmHg. [2–4].
Mặc dù vậy, để bảo tồn các tế bào mỡ,
điều quan trọng là phải áp dụng một mức độ
lực đứt gãy thấp.
Lực đứt gãy xảy ra khi một lực tác dụng
song song với một bề mặt, bất chấp lực
vuông góc chịu tác dụng của nó. Ví dụ: cọ xát
hai bàn tay của một người với nhau gây ra lực
Hình. 9.2 Pala di Brera hoặc Brera Altarpiece nổi
tiếng, chi tiết. (Được xuất bản dưới sự cho phép
của © Mario Goisis 2018. Mọi quyền được bảo lưu
Hình. 9.3 Máy đo độ nhớt (còn gọi
là nhớt kế) là một dụng cụ dùng để
đo độ nhớt của chất lỏng.Máy đo
độ nhớt xoay dựa trên ý tưởng rằng
mô-men xoắn cần thiết để quay một
vật thể trong chất lỏng là một hàm
của độ nhớt của chất lỏng đó. Chúng
đo mô-men xoắn cần thiết để quay
một bob trong chất lỏng với tốc độ
đã biết. (do Istituto Ganassini, Milano
cung cấp). (Được xuất bản dưới sự cho
phép của © Mario Goisis 2018. Mọi
quyền được bảo lưu)
đứt gãy, trong khi áp hai lòng bàn tay của một
người vào nhau thì không.
Đối với quá trình làm đầy mỡ, lực đứt gãy
được áp dụng cho chất béo khi nó được đẩy
qua các ống, giống như các cannula dùng để
thu hoạch hoặc để tiêm. Là một vật liệu dẻo,
chất béo trải qua quá trình cắt mỏng. Điều
này đơn giản có nghĩa là khi lực đứt gãy tăng
lên, độ nhớt của vật liệu giảm.
Một số vật liệu cắt mỏng có thể “tự phục
hồi”, nghĩa là chúng phục hồi hoàn toàn độ
nhớt ban đầu sau khi tiếp xúc với các lực như
lực đứt gãy hoặc áp suất âm.
Đây không phải là trường hợp của chất
béo. Trên thực tế, việc chất béo tiếp xúc với
lực đứt gãy cao hoặc áp suất âm sẽ dẫn đến
hư hỏng không thể phục hồi và tính toàn vẹn
cơ học của chất béo không thể phục hồi hoàn
toàn sau thiệt hại này.
Để đánh giá lực đứt gãy được áp dụng
bằng các phương pháp khác nhau, chúng tôi
đo độ nhớt của mô sau khi thu hoạch, sau khi
xử lý và sau khi tiêm.
Mục đích của các quy trình khác nhau là
làm giảm độ nhớt càng ít càng tốt trong tất
cả các bước ghép mỡ.
Ở đây, một máy đo động học được sử
dụng để đo mô-đun lưu trữ và lực đứt gãy mà
tại đó các mô bắt đầu mất các đặc tính giống

Chương 9
So sánh các kỹ thuật khác nhau của cấy ghép mỡ
90
như rắn của chúng (Hình 9.5). Độ nhớt cũng
được đo lường và các đặc tính chung của các
nhóm xử lý được đánh giá định tính bằng thử
nghiệm lam kính (Hình 9.6 và 9.7).
Mặc dù vậy, các mẫu mô mỡ được thu
thập từ mỗi phương pháp đã được chuẩn bị
để đánh giá bằng kính hiển vi bằng cách trải
mô lên các lam kính hiển vi. Các mẫu được
quan sát về sự hiện diện của lipid tự do và
các tế bào máu. Hình ảnh mô tả được chụp ở
độ phóng đại 100 bằng máy ảnh kỹ thuật số
(Hình 9.8, 9.9 và 9.10)
9.1.1 Phương pháp
Các mẫu hút mỡ được lấy từ 10 người
hiến tặng khỏe mạnh sau khi có sự đồng ý
đã được thông báo, theo hướng dẫn của
AeQ (). Các mẫu hút mẫu
được thu bằng các kỹ thuật khác nhau.
Độ nhớt của chất béo được thu hoạch
bằng các kỹ thuật khác nhau được đo.
Mỡ hút được sau đó được xử lý bằng các
kỹ thuật khác nhau. Sau khi xử lý, độ nhớt của
chất béo, được thu hoạch và xử lý bằng các
kỹ thuật khác nhau, được đo.
Cuối cùng, mỡ hút được đã qua xử lý
được đưa qua ống cannula để tiêm. Sau khi
đi vào ống này, độ hiển thị của chất béo được
thu hoạch, xử lý và tiêm bằng các kỹ thuật
khác nhau đã được đo lường.
Đặc biệt, một máy đo độ nhớt đã được sử
dụng để đo độ lưu trữ và lực đứt gãy tại các
mô -được phân tích bắt đầu mất các đặc tính
giống rắn của chúng (Hình 9.11). Độ nhớt
cũng được đo và các đặc tính chung của các
nhóm xử lý được đánh giá định tính bằng thử
nghiệm lam kính (Hình 9.12 và 9.13).
Một phần nhỏ của mỗi mẫu được đặt trên
một tấm kính phẳng. Sau đó, tấm kính được
quay nhanh 60 độ và các mẫu khác nhau
được quan sát bằng các hình ảnh tiêu chuẩn
thu được bằng máy ảnh Canon kỹ thuật số.
Hình. 9.4 Thử nghiệm trượt kính. (Được xuất bản dưới sự cho phép của ©
Mario Goisis 2018. Mọi quyền được bảo lưu)

Quy trình PRP và tiêm cấy mỡ Nâng Cao
e-bacsy.com
91
Hình. 9.5 Thử nghiệm trượt kính. (Được xuất bản dưới sự cho phép của © Mario Goisis 2018.
Mọi quyền được bảo lưu)
9.1.2 Kết quả
9.1.2.1 Thu hoạch
Kích thước cổng cannulas ảnh hưởng
trực tiếp đến độ nhớt của tế bào mỡ ghép.
Đặc biệt, việc sử dụng kích thước cổng lớn
hơn làm tăng độ nhớt của mảnh ghép.
Mức áp suất âm cao làm đứt gãy tế bào
mỡ: tốt hơn nên sử dụng ống tiêm 10 cc hoặc
VacLok để tránh quá áp suất âm.
Ống cannula Goisis có liên quan đến việc
bảo quản chất béo tốt hơn so với ống cannula
có đầu tròn 3 mm với một cổng hút hình elip
duy nhất ở phía gần đầu xa của nó (đường
kính cổng: 3 × 9 mm) (Hình 9.14 và 9.15).
9.1.2.2 Xử lý
Sau khi gạn (Hình 9.16, 9.17 và 9.18), lớp
dưới của mẫu đã gạn là một mô lỏng có độ
nhớt thấp, nhưng màu của nó là đỏ cam vì
nó rất giàu tế bào đỏ (Hình 9.19, 9.20, 9.21 ,
9.22, 9.23 và 9.24).
Sau khi ly tâm, lớp giữa của mẫu ly tâm
là một mô đặc có độ nhớt cao, tuy nhiên, rất
giàu tế bào mỡ bị phá hủy, không thể sống
được (Hình 9,25).
Sau khi rửa và lọc, chất béo có độ nhớt rất
thấp và màu vàng (Hình 9.26).
9.1.2.3 Tiêm chích
Tiêm chất béo có độ nhớt cao hoặc trung
bình bằng cách sử dụng một ống cannula
nhỏ (22 Gauge) làm giảm độ nhớt vì lực đứt
gãy cao.
Cần tính tổng các cân nhắc này.

Chương 9
So sánh các kỹ thuật khác nhau của cấy ghép mỡ
92
Hình. 9.8 Ống tiêm 60cc chứa đầy chất béo trộn
với chất gây tê cục bộ và tế bào máu. (Được xuất
bản dưới sự cho phép của © Mario Goisis 2018.
Mọi quyền được bảo lưu)
Hình. 9.9 Ống tiêm được đặt ở vị trí thẳng đứng
vào khay Microfat (). (Được
phép của Istituto Ganassini, Milano). (Được xuất
bản với sự cho phép của © Mario Goisis 2018. Mọi
quyền được bảo lưu)
Hình. 9.6 Mẫu chất béo sau khi thu hoạch (và
trước khi xử lý) với một ống cannula có đầu tròn
3 mm với một cổng hút hình elip duy nhất ở phía
gần đầu xa của nó (đường kính cổng: 3 × 9 mm).
Một thiệt hại lớn của các tế bào được chứng minh.
(Được xuất bản dưới sự cho phép của © Mario
Goisis 2018. Mọi quyền được bảo lưu)
Hình. 9.7 Chất béo sau khi thu hoạch bằng
Goisis Cannula và trước khi xử lý. Việc bảo quản tốt
và toàn vẹn các tế bào mỡ đã được chứng minh.
(Được xuất bản dưới sự cho phép của © Mario
Goisis 2018. Mọi quyền được bảo lưu)